Characterization of Influenza Virus Reassortants Based on New Donor Strain A/HK/1/68/162/35(H3N2)


Cite item

Full Text

Abstract

Influenza reassortant viruses A/SPb/HK/09(H1N1), A/Astana/HK/2009 (H5N1), A/Otar/HK/2010(H3N8), and A/Perth/ HK/2011(H3N2), carrying surface antigens of different subtypes, were constructed on the basis of new potential unified donor strain A/HK/1/68/162/35(H3N2). The virulence and reproduction activity of the obtained reassortants were tested. The safety of the candidate live and inactivated influenza vaccines produced from the reassortant viruses was demonstrated. The study demonstrates that A/HK/1/68/162/35 can be used as a unified donor for attenuated and high-yield vaccine reassortants.

Full Text

Общими требованиями для вирусов гриппа А - доноров генов внутренних и неструктурных белков, используемых для получения реассортантных вакцинных и производственных штаммов (для живых и инактивированных гриппозных вакцин), являются безопасность и иммуногенность. При получении вакцинных штаммов для живых гриппозных вакцин (ЖГВ) используются доноры аттенуации, обладающие двумя важными фенотипическими признаками - холодоадаптирован-ностью (са) и температурочувствительностью (ts). В настоящее время вакцинные штаммы для ЖГВ получают с использованием холодоадаптированнных доноров аттенуации: в России - А/Лен/17 и В/СССР/60/69, в США - А/Лпп Arbor/6/60 и В/Ann Arbor/1/66 [1, 3, 12]. В ряде лабораторий ведутся исследования с целью получения новых доноров для ЖГВ [11, 13]. Важнейшим свойством штамма-донора для получения инактивированных гриппозных вакцин (ИГВ) является высокая репродуктивность. Различия в требованиях к вакцинным штаммам для ЖГВ и ИГВ определяют существование доноров с разными свойствами. Разработанный в НИИ гриппа новый универсальный донор A/ HongKong/1/68/162/35(H3N2) [9] ориентирован на получение реассортантных штаммов как для ЖГВ, так и для ИГВ. Цель настоящей работы состояла в получении ре-ассортантных штаммов и исследовании способности донора передавать такие важные для вакцинных штаммов свойства, как безопасность, ts, са и высокая репродуктивность. Материалы и методы Вирусы. В работе использовали следующие вирусы: А/HongKong/1/68/162/35(Н3N2) - А/ГК/ХА-холодоадаптированный штамм, кандидат в доноры аттенуации и высокой репродуктивной активности; А/Санкт-Петербург/48/09(Н1Ш) - А/СПБ/48/09 -эпидемический вирус, антигенно схожий со штаммом А/BrisЪaiп/59/07(Н1N1), получен из коллекции вирусов ФГБУ НИИ гриппа; A/Perth/16/2009(Н3N2) - A/Perth/16/09 - эпидемический вирус, получен из Центра по контролю и профилактике инфекционных болезней (CDC), Атланта, США; А/Eauine/ Otar/764/07(Н3N8) - А/Otar/764/07 - штамм вируса гриппа лошадей, получен из НИИ проблем биологической безопасности, Республика Казахстан; A/Astana/6/05/PR8(UW) 2:6(H5N1) - А/Astana/PR -рекомбинантный штамм, созданный методом обратной генетики на основе донора PR8 и содержащий нейраминидазу (NA) и модифицированный гемагглю-тинин (НА) вируса A/chicken/Astana/6/05(H5N1) [10]. Реассортацию проводили классическим методом в 10-11-дневных развивающихся куриных эмбрионах (РКЭ) [2]. Состав генома реассортантов определяли методом ОТ-ПЦР и рестрикционного анализа, аналогично ранее описанной методике [5] с использованием специально подобранных праймеров и рестриктаз (табл. 1). Принадлежность NA определяли методом ОТ-ПЦР с типоспецифичными праймерами к различным субтипам. Принадлежность НА определяли в РТГА [8]. Температурочувствителъность и холодоадапти-рованность вирусов оценивали по результатам их параллельного титрования в РКЭ, при оптимальной (32oC), повышенной (39oC) и пониженной (26oC) температуре и выражали в виде разницы показателей инфекционной активности в lg ЭИД50/0,2 мл (соответственно RCT39 и RCT26). Штамм считали температурочувствительным, если RCT39 был более 5 lg ЭИД50/0,2 мл и холодоадаптированным, если RCT26 был не более 3 lg ЭИД50/0,2 мл. Подготовка прототипов вакцинных препаратов. Для получения прототипов ЖГВ накопленный вирусный материал реассортантных вирусов разводили фосфатно-солевым буфером (ФСБ) до концентрации 6,5 lg ЭИД50/мл. Препараты ИГВ получали методом изопикнического центрифугирования в градиенте плотности сахарозы. Инактивацию проводили 0,02% формалином. Содержание НА в вакцинных препаратах оценивали методом электрофореза в полиакриламидном геле с последующей денситометрией. Безопасность для экспериментальных животных оценивали на мышах линии Balb/c массой 18-20 г. Прототип ЖГВ вводили мышам интраназально двукратно с интервалом 2 нед в дозе 6,5 lg ЭИД50/50 мкл. На 3-и сутки после первой инокуляции оценивали репродукцию реассортантов в легких и носовых ходах мышей по показателям титрования 10% суспензии органов в куриных эмбрионах. Прототип ИГВ вводили внутрибрюшинно двукратно с интервалом 2 нед в дозе 10 мкг НА/мышь. Безопасность препаратов оценивали по динамике массы тела животных. Все работы с животными выполняли согласно Правилам проведения работ с использованием экспериментальных животных. Таблица 1 ОТ-ПЦР рестрикционный анализ для определения состава генома реассортантов на основе донора А/HongKong/1/68/162/35(Н3М2) и штаммов А/Санкт-Петербург/48/09 (H1N1), А/Equine/Otar/764/2007(Н3N8), A/Astana/6/05/PR8(UW) 2:6(H5N1) и А/Perth/ 16/09(H3N2) Ген Участок Наличие сайта рестрикции (позиция расщепления) а/гк/ха А/СПб/48/09 РВ2 2851-1264 EcoRI(1100) - РВ1 1237-1649 Hind III(1504) - PA 1474-2195 Ama87 I(1612) - NP 6-743 BamH I(262, 478) BamH I(478) M 551-957 Bsa29 I(845) - NS 342-882 - BslF I (585, 666) A/Otar/764/07 PB2 51-689 - EcoR I (540) PB1 1237-1649 Hind III(1504) - PA 1474-2195 BamH I(1242) - NP 6-743 BamH I(262, 478) - M 551-957 Bsa29 I(845) - NS 107-441 BslF I(130, 335) BslF I(130) A/Astana/PR PB2 851-1264 EcoR I(1100) - PB1 1237-1649 Hind III(1504) - PA 1141-1608 BamH I(1242) - NP 6-743 BamH I(262, 478) BamH I (478) M 551-957 Bsa29 I(845) - NS 107-441 BslF I(130, 335) A/Perth/16/09 PB2 851-1264 EcoR I(1100) - PB1 1237-1649 Hind III(1504) - PA 1141-1608 BamH I(1242) - NP 6-743 BamH I(262, 478) BamH I(478) M 551-957 Bsa29 I(845) - NS 107-441 BslF I(130, 335) BslF I(130) Рис. 1. Результаты электрофореза фрагментов генов РВ1, РВ2, PA, NP, М и NS клона 86 вируса A/Astana/ HK/2:6/2009 и контрольных образцов А/HongKong/1/68/162/35 (ИЕла) и Astana/PR8 (Ast). Последовательно нанесены фрагменты до и после (отмечено *) рестрикции. Рис. 2. Результаты электрофореза фрагментов генов РВ1, РВ2, PA, NP, М и NS клонов 28/2 и 28/3 вируса А/Отар/ НК/2:6/2009 и контрольных образцов А/HongKong/1/68/162/35 (НК) и А/Отар/746/07/ (От). Последовательно нанесены фрагменты до и после (отмечено *) рестрикции. Также представлены результаты ОТ-ПЦР с типоспецифичными праймерами к различным субтипам NA. Таблица 2 Характеристика репродуктивных свойств реассортантов на основе донора A/HongKong/1/68/162/35 и их стабильности Вирус Инфекционная активность, lg ЭИД50/0,2 мл, при RCT26 RCT 39 Гемаг глютини рующая активность, ГАЕ50/мкл После 5 пассажей в РКЭ Фенотип 26oC 32oC 39oC RCT26 RCT39 гемагглютини-рующая активность, ГАЕ50/мл А/HongKong/68/162/35 8,5-9,5 9,0-10,0 1,5 0,5 7,5 1024-2048 1,5 7,5 1024-2048 ts-, са- А/Санкт-Петербург/48/09 4,0 8,25 3,75 4,25 4,5 256 non-ts-, non-ca- А/СПб/HK/2:6/09-реассортант 6,5 9,3 1,5 2,8 7,8 512-1024 2,5 7,0 512-1024 ts-, са- A/Perth/16/2009 2,0 6,0 1,5 4,0 4,5 128 non-ts-, non-ca- А/Perth/HK/2:6/2011-реассортант 7,75 9,5 0,5 1,25 9,0 512 1,5 8,0 512 ts-, са- A/Astana/6/05/PR8(UW) 2:6 3,5 9,5 8,5 6,0 1,0 1024 non-ts-, non-ca- А/Astana/HK/2:6/2009- 7,5 9,5 3,5 2,0 6,0 1024 0,5 7,75 1024 ts-, caреассортант А/Equina/Otar/764/07 2,5 7,5 5,5 5,0 2,0 256 non-ts-, non-ca- А/Otar/HK2:6/2010-реассортант 9,0 9,5 1,5 0,5 8,0 512-1024 1,0 8,0 1024 ts-, ca- Результаты и обсуждение Биологические свойства реассортантных штаммов, полученных на основе одного и того же донора, могут в значительной степени варьировать в зависимости от соотношения родительских генов [6]. В данном исследовании использовали реассортанты с одинаковой структурой генома 6:2 (6 генов, кодирующих внутренние и неструктурные белки, от донора А/ГК/ХА и 2 гена, кодирующих поверхностные белки, от эпидемических штаммов). На основе штамма А/ГК/ХА были получены реассортанты с актуальными эпидемическими вирусами А/СПб/48/09 и A/Perth/16/09, а также с эпизоотическим штаммом А/Otar/764/07 и рекомбинантным штаммом А/Astana/PR. В табл. 1 представлены итоговые схемы рестрикционного анализа. Исследование состава генома реас-сортантных штаммов показано на примере штаммов А/Astana/HK/09 и А/Otar/HK/10 (рис. 1 и 2). Реассортанты, полученные на основе донора А/ГК/ ХА, показали высокую репродуктивную активность в РКЭ (табл. 2). Инфекционная активность достигала 9,3-9,5 lg ЭИД50/0,2 мл, гемагглютинирующая - 512-1024 ГАЕ /мкл. Все реассортанты приобрели ts-, са-фенотип. После 5-кратного пассирования в системе РКЭ реассортанты сохранили фенотипические характеристики, присущие исходным вариантам, что свидетельствует о стабильности приобретенных ре-ассортантами свойств. Показатели RCT26 колебались в пределах 0,5-2,5 lg ЭИД /0,2 мл, RCT - в пределах 7,0-8,0 lg ЭИД50/0,2 мл. Таблица 3 Характеристика безвредности и инфекционности реассортантов на основе донора A/HongKong/1/68/162/35 Вирус Репродукция в легких, lg ЭИД^/мл Репродукция в носовых ходах, lg ЭИД^/мл Максимальная потеря веса, % Летальность, % А/HongKong/1/68/162/35 2,75 ± 0,2 5,5 ± 0,3 0 0 А/Санкт-Петербург/48/09 4,25 ± 0,3 2,5 ± 0,2 1 0 А/СПб/HK/2:6/09-реассортант 0,5 ± 0,0 0,75 ± 0,1 0,5 0 A/Astana/6/05/PR8(UW)2:6 5,0 ± 0,2 2,5 ± 0,1 30 100 A/Astana/HK/2:6/2009-реассортант 1,5 ± 0,2 0,75 ± 0,1 1 0 А/Equina/Otar/764/07 5,75 ± 0,3 4,25 ± 0,3 25 10 A/Otar/HK/2:6/2010-реассортант 1,75 ± 0,1 2,5 ± 0,2 2 0 Изучение безвредности прототипов ЖГВ показало, что все реассортантные штаммы не были патогенным для мышей при интраназальном введении, т. е. не вызывали снижение массы тела и развитие клинических симптомов инфекции, в то время как “дикие” родительские штаммы и штамм А/Astana/PR вызывали заметное снижение массы тела (до 25-30%), проявление клинических признаков заболевания и даже гибель животных (табл. 3). Уровень репродукции реассортантов в легких снижался по сравнению с родительскими штаммами на 3,5-4,0 lg ЭИД50/мл. Показатель репродукции в носовых ходах мышей составлял 0,75-2,5 lg ЭИД50/мл. Несмотря на то что уровень репродукции вируса А/Astana/HK в легких был незначительно выше, чем уровень репродукции в верхних дыхательных путях, среди мышей отсутствовала летальность и уровень снижения массы тела не превышал 1%. Результаты исследования безвредности и репродукции в дыхательных путях мышей реассортанта А/Astana/HK коррелируют с литературными данными, касающимися оценки безопасности вакцинных штаммов H5N1 [4, 7]. Значительное снижение репродуктивной активности реассортантов на основе холодоадаптированного донора А/ГК/ХА в легких мышей и способность к репродукции в носовых ходах подтверждают аттенуированный фенотип вируса для мышей. Внутрибрюшинное введение прототипов ИГВ также не приводило к появлению каких-либо симптомов заболевания. Все животные остались живы, максимальное снижение не превышало 1,5%. Таким образом, показано, что гены внутренних и неструктурных белков высокорепродуктивного донора аттенуации А/ГК/ХА повышают репродукцию полученных на его основе реассортантов по сравнению с дикими штаммами. Реассортанты наследуют от донора ts-, са-фенотип и сохраняют биологические свойства после 5-кратного пассирования в куриных эмбрионах. В результате исследования безвредности прототипов препаратов ЖГВ и ИГВ на основе реас-сортантных штаммов у лабораторных животных не обнаружены признаки патогенности и токсичности. Полученные данные позволяют рассматривать вирус гриппа A/HongKong/1/68/162/35(H3N2) в качестве кандидата в универсальные доноры аттенуации и высокой репродуктивности.
×

References

  1. Александрова Г. И., Климов А. И. Живая вакцина против гриппа. СПб.; 1994.
  2. Александрова Г. И. Применение метода генетической реассортации для получения вакцинных штаммов вируса гриппа. Вопросы вирусологии. 1997; 4: 387-95.
  3. Гендон Ю. З. Живая холодоадаптированная гриппозная вакцина: современное состояние. Вопросы вирусологии. 2011; 1: 4-17.
  4. Дешева Ю. А., Лу X., Рекстин А. Р. и др. Прививочные свойства реассортантного холодоадаптированного штамма вируса гриппа A(H5N1) при интраназальном введении мышам. Вопросы вирусологии. 2007; 4: 27-30.
  5. Дешева Ю. А., Руденко Л. Г., Климов А. И. Определение состава генома реассортантных штаммов вируса гриппа В методом рестриктазного анализа. Вопросы вирусологии. 2007; 3: 16-9.
  6. Кочергин-Никитский К. С., Руднева И. А., Тимофеева Т. А. и др. Реассортация и взаимодействие генов при скрещивании низкопатогенного вируса гриппа птиц подтипа Н5 с вирусом гриппа человека. Вопросы вирусологии. 2007; 1: 23-8.
  7. Красильников И. В., Гамбарян А. С., Машин В. В. и др. Иммуногенные и протективные свойства инактивированных и живых кандидатных вакцин против высокопатогенных вирусов гриппа H5N1. Вопросы вирусологии. 2010; 4: 16-9.
  8. Методические указания МУ 3.3.2.1758-03. Методы определения показателей качества иммунобиологических препаратов для профилактики и диагностики гриппа. М.; 2003.
  9. Патент РФ на изобретение «Вирус гриппа А/Гонконг/1/68/162/35 - универсальный донор внутренних генов для вакцинных и производственных штаммов». Заявка № 2011131124 от 25.07.2011.
  10. Строчков B. M., Червякова О. В., Султанкулова К. Т. и др. Рекомбинантные штаммы A/AstanaRG/6:2/2009 и A/AstanaRG/5:3/2009 вируса гриппа, полученные методом обратной генетики. В кн.: Материалы Международной конференции «Современное состояние генетики в Казахстане». Астана; 9 ноября 2010: 60-3.
  11. Akopova I., Tfasman Т., Markushin S. et al. Novel cold-adapted influenza virus strain A/Krasnodar/101/35/59 (H2N2) for live influenza vaccine production. In: IUMS Congress: 14-th International Congress of virology, Istanbul, Turkey, 10-15 August, 2008. Istanbul; 2008: 159.
  12. Kendal A. P., Maasab H. F., Alexandrova G. I., Gherudon Y. Z. Development of cold-adapted recombinant live attenuated influenza A vaccines in the USA and USSR. Antiviral Res. 1981; 1: 339-65.
  13. Lee K., Seong В., Development of live attenuated vaccines: genetic, biological and immunological characterization of the influenza A virus. In: XII International conference on negative strand viruses. Pisa, Italy, 14-19 June 2003: abstr. 337.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2012 Potapchuk M.V., Repko I.A., Sergeeva M.V., Korotkov A.V., Komissarov A.B., Sandybayev N.T., Chervyakova O.V., Khairullin B.M., Tsybalova L.M.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-77676 от 29.01.2020.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies