Dynamics of Changes in the Composition of Leukocyte Population of Peripheral Blood during the African Swine Fever


Cite item

Full Text

Abstract

The comparison of the composition of leukocytes of peripheral blood of healthy and infected swine revealed the quantitative alterations, as well as the appearance of new cells in leukocyte population during African swine fever. It was determined that African swine fever virus induced mass-scale mortality of cells of peripheral blood, especially lymphocytes and neutrophiles. The number of the dead cells reaches 60% of the initial number of all cells at the end of infection. It was also revealed that the appearance of atypical lymphocytes and lymphoblasts was observed during viral infections. Most of these cells are characterized by the presence of additional nucleus.

Full Text

Африканская чума свиней (АЧС), или восточноафриканская лихорадка, - высококонтагиозное заболевание, которое вызывает крупный оболочечный вирус, содержащий двуспиральную ДНК. Он является единственным представителем семейства Asfarviridae (Dixon et al., 2005) и обладает высокой вирулентностью. Репродукция вируса происходит в лимфоидной и миелоидной тканях органов иммунной системы, эндотелиальных клетках кровеносных и лимфатических сосудов, но прежде всего в клетках моноцитарно-макрофагального ряда (Mebus, 1987; Gomez et al., 1999) и сопровождается цитопатическим действием на лимфоциты, макрофаги и эндотелиальные клетки. Это приводит к лейкопении и резкому ослаблению противовирусных иммунных механизмов, т. е. к иммунодефициту и смертельному исходу. Основы биологии патологических изменений лимфоидной ткани, вызываемых АЧС, непонятны до сегодняшнего дня, однако неоспорима ключевая роль моноцитарно-макрофагальной системы и продукция ею провоспалительных цитокинов (Whittall, Park-house, 1997; Gomez et al, 1999). Ранее в условиях in vitro в костном мозге нами было продемонстрировано возникновение атипичных Контактная информация: Каралян Завен Александрович; e-mail:zkaralyan@yahoo.com клеток под воздействием вируса АЧС (Каралова Е. М. и соавт., 2011). В связи с этим представлялось важным изучение динамики изменений в популяционном составе нейтрофилов, возможного появления их атипичных форм в периферической крови свиней при экспериментально вызванной острой форме АЧС, чему и посвящено настоящее исследование. Материалы и методы Работу проводили на 3 здоровых и 6 зараженных вирусом АЧС свиней с массой тела около 40 кг. Исследовали динамику изменений популяционного состава лейкоцитов периферической крови свиней при экспериментально вызванной внутримышечным введением вируса АЧС с 3-х по 7-е сутки развития болезни. В работе использовали вирус АЧС генотипа II, поразивший Грузию, а затем и соседние страны, в том числе Армению [3, 13]. Инфекционный титр вируса АЧС определяли методом гемадсорбции [16]. Доза вируса АЧС, используемая в опытах на свиньях, составляла 104 гемадсорбирующих единиц (ГАЕ50/мл). Периферическую кровь для приготовления мазков брали из уха здоровых и зараженных вирусом свиней. Мазки фиксировали в 96% этиловом спирте и окра 27 шивали азур-эозином по Романовскому-Гимзе [12]. Подсчитывали процентное соотношение всех нейтро-филов крови, а также клеток, выявленных при патологии. Весь материал статистически обрабатывали и с помощью t-критерия оценивали значимость различий между полученными сравниваемыми значениями. Результаты Течение экспериментальной инфекции не отличалось от описанного в приведенных источниках. Инфекция достигала агональной стадии к концу 6-х или на 7-е сутки с момента заражения [4, 9]. В первые 2 сут после заражения симптомы практически отсутствовали, несмотря на виремию, наблюдаемую со 2-х суток (до 4-5 ГАЕ/мл). С 3-4-х суток наблюдали гипертермию, потерю аппетита, затем быстрое нарастание основной симптоматики, выражающееся в подъеме температуры тела до 40-42oC, снижении активности, затруднении дыхания. На 5-6-е сутки у некоторых животных обнаруживали кровь в фекалиях. Симптоматика нарастала, и на терминальной стадии (начало 7-х суток) животных умерщвляли согласно протоколу. Изучали 12 видов клеток, из которых у здоровых свиней встречается 8 видов лейкоцитов. Из них более 60% составляют лимфоциты. Лимфобласты, эритро-бласты, атипичные и разрушенные клетки полностью отсутствовали. Начиная с 3-х суток от начала опыта, в крови появляются лимфобласты, количество которых составляет около 3% клеток крови. По мере удлинения сроков заболевания их количество увеличивалось более чем в 3 раза, достигая к моменту гибели животных 10% популяции (рис. 1). Атипичные лимфоциты также были обнаружены на 3-и сутки заболевания и, незначительно меняясь, сохранялись на всем протяжении болезни, в среднем составляя около 5% популяции. Количество эри-тробластов на 3-4-е сутки составляло 6% популяции, а уже на 4-е сутки удваивалось, сохраняясь на 5-е сутки, а затем постепенно уменьшалось и к моменту гибели составляло 3% популяции, что, вероятнее всего, связано с массовой гибелью всех клеток периферической крови, достигающей к 7-м суткам 60% популяции. Гибель всех видов лейкоцитов начиналась с 3-х суток заболевания и, постоянно нарастая, к 7-м суткам уменьшалась более чем в 3 раза (см. таблицу). Количество моноцитов крови зараженных свиней вплоть до 6-х суток изменялось незначительно по сравнению со здоровыми свиньями, а затем недостоверно снижалось. Как и в контроле, нами не были обнаружены юные нейтрофилы, а палочкоядерные и сегментоядерные формы, составляющие в контрольной группе животных 25% популяции, в течение болезни вели себя по-разному. Если количество сегментоядерных нейтро-филов на всем протяжении болезни достоверно уменьшалось и к 7-м суткам составляло всего 0,3% клеток Рис. 1. Разные типы клеток периферической крови свиней при африканской чуме. Слева - клетки, окрашенные по Гимзе (ув. 1000); справа - ядра аналогичных клеток, окрашенные реактивом Шиффа по Фельгену; А, Б, В, Г - лимфобласты, Д, Е - пролимфоциты, Ж, З - лимфоциты, И, К - оксифильные эритробласты периферической крови. 28 Изменение количества (в %) разных видов клеток периферической крови в норме и в различные сроки после заражения свиней вирусом АЧС Виды клеток Сроки после начала инфекции (периферическая т с ь) в о кро контроль 3-и 4-е 5-е 6-е 7-е Лимфобласты 0 3,0 ± 1,1 3,5 ± 0,9 2,0 ± 0,5 9,0 ± 4,1 10,0 ± 4,0 Малые лимфоциты 45,0 ± 1,7 27,0 ± 1,8 31,0 ± 2,2 22,0 ± 1,8 19,0 ± 2,6* 11,0 ± 2,0* Средние лимфоциты 18,0 ± 2,2 14,0 ± 1,0 15,0 ± 2,8 14,0 ± 1,9 14,0 ± 1,3 5,0 ± 1,5* Крупные лимфоциты 4,0 ± 0,6 7,0 ± 1,4 6,0 ± 1,2 6,0 ± 1,0 7,0 ± 1,3 2,0 ± 0,7 Моноциты 6,0 ± 0,5 8,0 ± 0,7 7,0 ± 0,7 7,0 ± 0,8 7,0 ± 1,3 3,0 ± 1,2 Эозинофилы 5,0 ± 0,9 2,0 ± 0,2 2,0 ± 0,1 2,0 ± 0,4 3,0 ± 0,9 0,5 ± 0,3* Базофильные гранулоциты 2,0 ± 0,6 1,0 ± 0,2 1,0 ± 0,1 1,0 ± 0,4 1,0 ± 0,6 0,25 ± 0,3 Нейтрофилы палочкоядерные 6,0 ± 0,8 13,0 ± 1,8** 5,0 ± 0,5 8,0 ± 1,9 4,0 ± 1,5* 1,0 ± 1,0* Нейтрофилы сегментоядерные 13,0 ± 1,6 7,0 ± 1,0* 2,0 ± 0,6* 2,0 ± 0,4* 2,0 ± 0,7* 0,25 ± 0,3* Эритробласты 0 6,0 ± 1,1** 13,0 ± 2,2** 13,0 ± 2,0** 8,0 ± 1,2** 3,0 ± 1,0** Атипичные лимфоциты 0 4,0 ± 1,0** 2,5 ± 0,8** 6,0 ± 1,2** 5,0 ± 1,2** 5,0 ± 1,5** Разрушенные клетки 0 8,0 ± 2,0** 12,0 ± 3,7** 17,0 ± 3,1** 21,0 ± 4,5** 59,0 ± 5,6** Некроз 0 5,0 ± 0,8** 5,0 ± 1,1** 8,0 ± 1,5** 10,0 ± 2,1** 37,0 ± 3,8** Апоптоз 0 3,0 ± 0,6** 7,0 ± 1,9** 9,0 ± 1,8** 11,0 ± 2,3** 22,0 ± 2,0** Примечание. * - достоверно ниже по сравнению с контролем (p < 0,05-p < 0,01); ** - достоверно выше по сравнению с контролем (p < 0,05-p < 0,01). периферической крови зараженных свиней, то количество палочкоядерных нейтрофилов на 3-и сутки болезни достоверно увеличивалось (p < 0,001), затем на 5-е сутки резко и достоверно уменьшалось, приближаясь к количеству палочкоядерных нейтрофилов в контроле, и держалось на этом уровне вплоть до 6-х суток, недостоверно отличаясь от количества палочкоядерных нейтрофилов в периферической крови здоровых свиней, а затем на 7-е сутки достоверно уменьшалось. Количество эозинофильных и базофильных грану-лоцитов, постоянно и неуклонно уменьшаясь, к 7-м суткам оказывалось достоверно ниже, чем в контроле. Процент моноцитов крови недостоверно снижался лишь на 7-е сутки (p < 0,01). Известно, что в норме в периферической крови половозрелых млекопитающих подавляющее количество клеток красной крови составляют эритроциты с небольшой долей поли- и оксифильных ретикулоцитов. При АЧС уже на 3-и сутки заболевания в периферической крови обнаруживали около 6% эритробластов, количество которых удваивалось к 4-м суткам, сохраняясь на 5-е сутки, но уже на 6-е сутки уменьшалось, а к 7-м суткам составляло 3% популяции. Важно отметить, что уже на 3-и сутки заболевания отмечена гибель всех видов исследованных клеток вследствие как некроза, так и апоп-тоза. При этом на протяжении всего исследования вплоть до 6-х суток включительно клетки гибли примерно одинаково обоими путями, на 7-е сутки гибель клеток вследствие некроза достоверно превосходила их гибель вследствие апоптоза. Более 20% всех клеток гибло от апоптоза. Таким образом, можно считать, что при действии вируса чумы свиней в первую очередь поражаются лимфоциты и нейтрофилы. Для действия вируса характерно также появление в значительном количество атипичных лимфобластов и лимфоцитов, у большинства из них обнаружены дополнительные ядра, образование которых происходит в результате фрагментации ядра или дополнительного синтеза ДНК. Обсуждение Полученные нами данные демонстрируют сдвиг лейкоформулы влево. Уже с 3-х суток появляются лимфобласты, а также большое количество малосег-ментированных палочкоядерных нейтрофилов. Для острых форм АЧС характерны лимфопения, нейтро-филия [5]. Подобные изменения начинаются примерно на 2—4-е сутки от начала заболевания [15]. Это совпадает с полученными нами данными, свидетельствующими о выраженной лейкопении уже с 3-х суток, когда среднее количество лимфоцитов уменьшалось на 30%, а к моменту гибели животных - примерно на 75%. Молекулярные механизмы столь выраженного и быстро развивающегося патогенеза не совсем ясны, однако высокий процент гибнущих клеток отмечали уже на 3-и сутки. Постоянно нарастая, этот показатель к моменту гибели животных достигал более 65% популяции. Важно отметить, что достоверное количество разрушенных лимфоцитов погибает вследствие апоптоза [9, 11]. Патогенез иммунокомпетентных клеток при АЧС в целом хорошо описан. Так, возникновение лимфо-пении при АЧС сравнимо с начальной стадией некоторых форм инфекционно-токсического процесса и связано с миграцией лимфоидных клеток из сосудов в ткани к очагам воспаления. Несомненно, лимфо-пения связана также с разрушением некоторой части лимфоидных клеток вследствие репликации вируса [9]. Нейтрофилия с выраженным сдвигом влево характерна для обширного воспаления, являющегося основной патологией при острой форме АЧС. Однако все эти проявления относятся к неспецифическим изменениям в составе крови. Более важным представляется регулярное обнаружение атипичных форм лимфоцитов и лимфобластов (рис. 2), начиная с 3-х суток заболевания, что характерно для ряда вирусных инфекций [14]. Наиболее известны атипичные формы лимфоцитов при различных герпесвирусных инфекциях, прежде всего при инфекционном моно- 29 нуклеозе. Необходимо отметить, что в атипичных лимфоцитах часто встречаются дополнительные ядра, образующиеся как в результате фрагментации ядер, так и, возможно, в результате синтеза ДНК и/или РНК [6, 11]. Часто именно синтез ДНК приводит к альтерациям клеточного ядра, что является одной из наиболее характерных черт атипичных лимфоцитов [14]. Другая особенность АЧС - относительно малоинформативные показатели клеточного состава периферической крови в течение первых 2 сут с момента инфицирования, когда полученные данные практически не отличались от контрольных. Интересным представляется также обнаружение нами эритробластов в периферической крови уже на 3-и сутки заболевания. Пик их численности приходится на 4-5-е сутки. Эритробласты появляются в периферической крови млекопитающих при ряде заболеваний, в том числе при гемолитических анемиях [1, 2], что обусловлено гемолизом большого количества эритроцитов, в результате чего увеличивается скорость их образования. При АЧС гемолиз эритроцитов, вероятно, связан с ассоциацией вируса с последними и выявленный нами эри-тробластоз я
×

References

  1. Аброян Л. О. Механизмы регуляции процесса восстановления эритрона при острой анемии у крыс и влияние на них Са-дс-РНГ. - Ереван, 1999.
  2. Каралова Е. М., Магакян Ю. А., Аброян Л. О. Изменения в составе популяции, темпах пролиферации и специализации клеток эритроидного ряда крыс при экспериментальной анемии // Цитология. - 1993. - Т. 35, № 8. - С. 817-824.
  3. Саркисян Х. В., Геворкян Г. А. Проблемы раннего выявления и отслеживания африканской чумы свиней в Армении // Ветеринарная медицина 94. - Феодосия, 2010. - С. 96-101.
  4. Шуляк Б. Ф. Распространение и диагностика африканской чумы свиней // Рос. вет. журн. - 2008. - № 3. - С. 36-38.
  5. DeTray D. E., Scott G. R. Blood changes in swine with African swine fever // Am. J. Vet. - 1957. - Vol. 18. - P. 484-497.
  6. Epstein L. B., Brecher G. DNA and RNA synthesis of circulating atypical lymphocytes in infectious mononucleosis // Blood. - 1965. - Vol. 25. - P. 197-2003.
  7. Genovesi E. V., Knudsen R. C., Whyard T. C., Mebus C. A. Moderately virulent African swine fever virus infection: blood cell changes and infective virus distribution among blood components // Am. J. Vet. Res. - 1988. - Vol. 49, N 3. - P. 338-344.
  8. Gomez-Villamandos J. C., Hervas J., Mendez A. et al. Experimental African swine fever: apoptosis of lymphocytes and virus replication in other cells // J. Gen. Virol. - 1995. - Vol. 76. - P. 2399-2405.
  9. Gomez-Villamandos J. C., Bautista M. J., Carrasco L. et al. African swine fever virus infection of bone marrow: Lesions and pathogenesis // Vet. Pathol. - 1997. - Vol. 34. - P. 97-107.
  10. Granja A. G., Nogal M. L., Hurtado C. et al. Modulation of p53 cellular function and cell death by African swine fever virus // J. Virol. - 2004. - Vol. 78, N 13. - P. 7165-7174.
  11. Horwitz D. A., Stastny P., Ziff M. Circulating deoxyribonucleic acid-synthesizing mononuclear leukocytes. I. Increased numbers of proliferating mononuclear leukocytes in inflammatory disease // J. Lab. Clin. Med. - 1970. - Vol. 76. - P. 391-402.
  12. Romeis B. Mikroskopische Technik. - Munich, 1948.
  13. Rowlands R. J., Michaud V., Heath L. et al. African swine fever virus isolate, Georgia // Emerg. Infect. Dis. - 2008. - Vol. 14, N 12. - P. 1870-1874.
  14. Simon M. W. The atypical lymphocyte // Int. Pediatr. - 2003. - Vol. 18, N 1.
  15. Wardley R. C., Wilkinson P. J. The association of African swine fever virus with blood components of infected pigs // Arch. Virol. - 1977. - Vol. 55. - P. 327-334.
  16. Wardley R. C., Wilkinson P. J., Hamilton F. African swine fever virus replication in porcine lymphocytes // J. Gen. Virol. - 1977. - Vol. 37. - P. 425-427.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2012 Karalova E.M., Arzumanyan H.H., Zakaryan H.S., Voskanyan H.E., Sarkisyan K.V., Karalyan Z.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-77676 от 29.01.2020.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies