Динамика изменений популяционного состава лейкоцитов периферической крови при экспериментально вызванной африканской чуме свиней
- Выпуск: Том 57, № 4 (2012)
- Страницы: 27-30
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.08.2012
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/12149
- ID: 12149
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Сравнение популяционного состава лейкоцитов периферической крови здоровых половозрелых свиней и лейкоцитов периферической крови при экспериментально вызванной острой форме африканской чумы свиней выявило серьезные изменения в их составе как в количественном, так и в качественном аспекте с появлением новых форм клеток в периферической крови, не характерных для свиней в норме. Установлено, что при действии вируса африканской чумы свиней происходит массовая гибель клеток периферической крови, основную часть которых составляют лимфоциты и нейтрофилы, хотя гибнут все виды лейкоцитов вследствие как некроза, так и апоптоза, и их количество к концу заболевания превышает 60% популяции. Для действия вируса характерно также появление в значительном количестве атипичных лимфобластов и лимфоцитов, у большинства которых обнаружены дополнительные ядра, образование которых происходит в результате фрагментации ядер или дополнительного синтеза ДНК.
Ключевые слова
Полный текст
Африканская чума свиней (АЧС), или восточноафриканская лихорадка, - высококонтагиозное заболевание, которое вызывает крупный оболочечный вирус, содержащий двуспиральную ДНК. Он является единственным представителем семейства Asfarviridae (Dixon et al., 2005) и обладает высокой вирулентностью. Репродукция вируса происходит в лимфоидной и миелоидной тканях органов иммунной системы, эндотелиальных клетках кровеносных и лимфатических сосудов, но прежде всего в клетках моноцитарно-макрофагального ряда (Mebus, 1987; Gomez et al., 1999) и сопровождается цитопатическим действием на лимфоциты, макрофаги и эндотелиальные клетки. Это приводит к лейкопении и резкому ослаблению противовирусных иммунных механизмов, т. е. к иммунодефициту и смертельному исходу. Основы биологии патологических изменений лимфоидной ткани, вызываемых АЧС, непонятны до сегодняшнего дня, однако неоспорима ключевая роль моноцитарно-макрофагальной системы и продукция ею провоспалительных цитокинов (Whittall, Park-house, 1997; Gomez et al, 1999). Ранее в условиях in vitro в костном мозге нами было продемонстрировано возникновение атипичных Контактная информация: Каралян Завен Александрович; e-mail:zkaralyan@yahoo.com клеток под воздействием вируса АЧС (Каралова Е. М. и соавт., 2011). В связи с этим представлялось важным изучение динамики изменений в популяционном составе нейтрофилов, возможного появления их атипичных форм в периферической крови свиней при экспериментально вызванной острой форме АЧС, чему и посвящено настоящее исследование. Материалы и методы Работу проводили на 3 здоровых и 6 зараженных вирусом АЧС свиней с массой тела около 40 кг. Исследовали динамику изменений популяционного состава лейкоцитов периферической крови свиней при экспериментально вызванной внутримышечным введением вируса АЧС с 3-х по 7-е сутки развития болезни. В работе использовали вирус АЧС генотипа II, поразивший Грузию, а затем и соседние страны, в том числе Армению [3, 13]. Инфекционный титр вируса АЧС определяли методом гемадсорбции [16]. Доза вируса АЧС, используемая в опытах на свиньях, составляла 104 гемадсорбирующих единиц (ГАЕ50/мл). Периферическую кровь для приготовления мазков брали из уха здоровых и зараженных вирусом свиней. Мазки фиксировали в 96% этиловом спирте и окра 27 шивали азур-эозином по Романовскому-Гимзе [12]. Подсчитывали процентное соотношение всех нейтро-филов крови, а также клеток, выявленных при патологии. Весь материал статистически обрабатывали и с помощью t-критерия оценивали значимость различий между полученными сравниваемыми значениями. Результаты Течение экспериментальной инфекции не отличалось от описанного в приведенных источниках. Инфекция достигала агональной стадии к концу 6-х или на 7-е сутки с момента заражения [4, 9]. В первые 2 сут после заражения симптомы практически отсутствовали, несмотря на виремию, наблюдаемую со 2-х суток (до 4-5 ГАЕ/мл). С 3-4-х суток наблюдали гипертермию, потерю аппетита, затем быстрое нарастание основной симптоматики, выражающееся в подъеме температуры тела до 40-42oC, снижении активности, затруднении дыхания. На 5-6-е сутки у некоторых животных обнаруживали кровь в фекалиях. Симптоматика нарастала, и на терминальной стадии (начало 7-х суток) животных умерщвляли согласно протоколу. Изучали 12 видов клеток, из которых у здоровых свиней встречается 8 видов лейкоцитов. Из них более 60% составляют лимфоциты. Лимфобласты, эритро-бласты, атипичные и разрушенные клетки полностью отсутствовали. Начиная с 3-х суток от начала опыта, в крови появляются лимфобласты, количество которых составляет около 3% клеток крови. По мере удлинения сроков заболевания их количество увеличивалось более чем в 3 раза, достигая к моменту гибели животных 10% популяции (рис. 1). Атипичные лимфоциты также были обнаружены на 3-и сутки заболевания и, незначительно меняясь, сохранялись на всем протяжении болезни, в среднем составляя около 5% популяции. Количество эри-тробластов на 3-4-е сутки составляло 6% популяции, а уже на 4-е сутки удваивалось, сохраняясь на 5-е сутки, а затем постепенно уменьшалось и к моменту гибели составляло 3% популяции, что, вероятнее всего, связано с массовой гибелью всех клеток периферической крови, достигающей к 7-м суткам 60% популяции. Гибель всех видов лейкоцитов начиналась с 3-х суток заболевания и, постоянно нарастая, к 7-м суткам уменьшалась более чем в 3 раза (см. таблицу). Количество моноцитов крови зараженных свиней вплоть до 6-х суток изменялось незначительно по сравнению со здоровыми свиньями, а затем недостоверно снижалось. Как и в контроле, нами не были обнаружены юные нейтрофилы, а палочкоядерные и сегментоядерные формы, составляющие в контрольной группе животных 25% популяции, в течение болезни вели себя по-разному. Если количество сегментоядерных нейтро-филов на всем протяжении болезни достоверно уменьшалось и к 7-м суткам составляло всего 0,3% клеток Рис. 1. Разные типы клеток периферической крови свиней при африканской чуме. Слева - клетки, окрашенные по Гимзе (ув. 1000); справа - ядра аналогичных клеток, окрашенные реактивом Шиффа по Фельгену; А, Б, В, Г - лимфобласты, Д, Е - пролимфоциты, Ж, З - лимфоциты, И, К - оксифильные эритробласты периферической крови. 28 Изменение количества (в %) разных видов клеток периферической крови в норме и в различные сроки после заражения свиней вирусом АЧС Виды клеток Сроки после начала инфекции (периферическая т с ь) в о кро контроль 3-и 4-е 5-е 6-е 7-е Лимфобласты 0 3,0 ± 1,1 3,5 ± 0,9 2,0 ± 0,5 9,0 ± 4,1 10,0 ± 4,0 Малые лимфоциты 45,0 ± 1,7 27,0 ± 1,8 31,0 ± 2,2 22,0 ± 1,8 19,0 ± 2,6* 11,0 ± 2,0* Средние лимфоциты 18,0 ± 2,2 14,0 ± 1,0 15,0 ± 2,8 14,0 ± 1,9 14,0 ± 1,3 5,0 ± 1,5* Крупные лимфоциты 4,0 ± 0,6 7,0 ± 1,4 6,0 ± 1,2 6,0 ± 1,0 7,0 ± 1,3 2,0 ± 0,7 Моноциты 6,0 ± 0,5 8,0 ± 0,7 7,0 ± 0,7 7,0 ± 0,8 7,0 ± 1,3 3,0 ± 1,2 Эозинофилы 5,0 ± 0,9 2,0 ± 0,2 2,0 ± 0,1 2,0 ± 0,4 3,0 ± 0,9 0,5 ± 0,3* Базофильные гранулоциты 2,0 ± 0,6 1,0 ± 0,2 1,0 ± 0,1 1,0 ± 0,4 1,0 ± 0,6 0,25 ± 0,3 Нейтрофилы палочкоядерные 6,0 ± 0,8 13,0 ± 1,8** 5,0 ± 0,5 8,0 ± 1,9 4,0 ± 1,5* 1,0 ± 1,0* Нейтрофилы сегментоядерные 13,0 ± 1,6 7,0 ± 1,0* 2,0 ± 0,6* 2,0 ± 0,4* 2,0 ± 0,7* 0,25 ± 0,3* Эритробласты 0 6,0 ± 1,1** 13,0 ± 2,2** 13,0 ± 2,0** 8,0 ± 1,2** 3,0 ± 1,0** Атипичные лимфоциты 0 4,0 ± 1,0** 2,5 ± 0,8** 6,0 ± 1,2** 5,0 ± 1,2** 5,0 ± 1,5** Разрушенные клетки 0 8,0 ± 2,0** 12,0 ± 3,7** 17,0 ± 3,1** 21,0 ± 4,5** 59,0 ± 5,6** Некроз 0 5,0 ± 0,8** 5,0 ± 1,1** 8,0 ± 1,5** 10,0 ± 2,1** 37,0 ± 3,8** Апоптоз 0 3,0 ± 0,6** 7,0 ± 1,9** 9,0 ± 1,8** 11,0 ± 2,3** 22,0 ± 2,0** Примечание. * - достоверно ниже по сравнению с контролем (p < 0,05-p < 0,01); ** - достоверно выше по сравнению с контролем (p < 0,05-p < 0,01). периферической крови зараженных свиней, то количество палочкоядерных нейтрофилов на 3-и сутки болезни достоверно увеличивалось (p < 0,001), затем на 5-е сутки резко и достоверно уменьшалось, приближаясь к количеству палочкоядерных нейтрофилов в контроле, и держалось на этом уровне вплоть до 6-х суток, недостоверно отличаясь от количества палочкоядерных нейтрофилов в периферической крови здоровых свиней, а затем на 7-е сутки достоверно уменьшалось. Количество эозинофильных и базофильных грану-лоцитов, постоянно и неуклонно уменьшаясь, к 7-м суткам оказывалось достоверно ниже, чем в контроле. Процент моноцитов крови недостоверно снижался лишь на 7-е сутки (p < 0,01). Известно, что в норме в периферической крови половозрелых млекопитающих подавляющее количество клеток красной крови составляют эритроциты с небольшой долей поли- и оксифильных ретикулоцитов. При АЧС уже на 3-и сутки заболевания в периферической крови обнаруживали около 6% эритробластов, количество которых удваивалось к 4-м суткам, сохраняясь на 5-е сутки, но уже на 6-е сутки уменьшалось, а к 7-м суткам составляло 3% популяции. Важно отметить, что уже на 3-и сутки заболевания отмечена гибель всех видов исследованных клеток вследствие как некроза, так и апоп-тоза. При этом на протяжении всего исследования вплоть до 6-х суток включительно клетки гибли примерно одинаково обоими путями, на 7-е сутки гибель клеток вследствие некроза достоверно превосходила их гибель вследствие апоптоза. Более 20% всех клеток гибло от апоптоза. Таким образом, можно считать, что при действии вируса чумы свиней в первую очередь поражаются лимфоциты и нейтрофилы. Для действия вируса характерно также появление в значительном количество атипичных лимфобластов и лимфоцитов, у большинства из них обнаружены дополнительные ядра, образование которых происходит в результате фрагментации ядра или дополнительного синтеза ДНК. Обсуждение Полученные нами данные демонстрируют сдвиг лейкоформулы влево. Уже с 3-х суток появляются лимфобласты, а также большое количество малосег-ментированных палочкоядерных нейтрофилов. Для острых форм АЧС характерны лимфопения, нейтро-филия [5]. Подобные изменения начинаются примерно на 2—4-е сутки от начала заболевания [15]. Это совпадает с полученными нами данными, свидетельствующими о выраженной лейкопении уже с 3-х суток, когда среднее количество лимфоцитов уменьшалось на 30%, а к моменту гибели животных - примерно на 75%. Молекулярные механизмы столь выраженного и быстро развивающегося патогенеза не совсем ясны, однако высокий процент гибнущих клеток отмечали уже на 3-и сутки. Постоянно нарастая, этот показатель к моменту гибели животных достигал более 65% популяции. Важно отметить, что достоверное количество разрушенных лимфоцитов погибает вследствие апоптоза [9, 11]. Патогенез иммунокомпетентных клеток при АЧС в целом хорошо описан. Так, возникновение лимфо-пении при АЧС сравнимо с начальной стадией некоторых форм инфекционно-токсического процесса и связано с миграцией лимфоидных клеток из сосудов в ткани к очагам воспаления. Несомненно, лимфо-пения связана также с разрушением некоторой части лимфоидных клеток вследствие репликации вируса [9]. Нейтрофилия с выраженным сдвигом влево характерна для обширного воспаления, являющегося основной патологией при острой форме АЧС. Однако все эти проявления относятся к неспецифическим изменениям в составе крови. Более важным представляется регулярное обнаружение атипичных форм лимфоцитов и лимфобластов (рис. 2), начиная с 3-х суток заболевания, что характерно для ряда вирусных инфекций [14]. Наиболее известны атипичные формы лимфоцитов при различных герпесвирусных инфекциях, прежде всего при инфекционном моно- 29 нуклеозе. Необходимо отметить, что в атипичных лимфоцитах часто встречаются дополнительные ядра, образующиеся как в результате фрагментации ядер, так и, возможно, в результате синтеза ДНК и/или РНК [6, 11]. Часто именно синтез ДНК приводит к альтерациям клеточного ядра, что является одной из наиболее характерных черт атипичных лимфоцитов [14]. Другая особенность АЧС - относительно малоинформативные показатели клеточного состава периферической крови в течение первых 2 сут с момента инфицирования, когда полученные данные практически не отличались от контрольных. Интересным представляется также обнаружение нами эритробластов в периферической крови уже на 3-и сутки заболевания. Пик их численности приходится на 4-5-е сутки. Эритробласты появляются в периферической крови млекопитающих при ряде заболеваний, в том числе при гемолитических анемиях [1, 2], что обусловлено гемолизом большого количества эритроцитов, в результате чего увеличивается скорость их образования. При АЧС гемолиз эритроцитов, вероятно, связан с ассоциацией вируса с последними и выявленный нами эри-тробластоз я×
Список литературы
- Аброян Л. О. Механизмы регуляции процесса восстановления эритрона при острой анемии у крыс и влияние на них Са-дс-РНГ. - Ереван, 1999.
- Каралова Е. М., Магакян Ю. А., Аброян Л. О. Изменения в составе популяции, темпах пролиферации и специализации клеток эритроидного ряда крыс при экспериментальной анемии // Цитология. - 1993. - Т. 35, № 8. - С. 817-824.
- Саркисян Х. В., Геворкян Г. А. Проблемы раннего выявления и отслеживания африканской чумы свиней в Армении // Ветеринарная медицина 94. - Феодосия, 2010. - С. 96-101.
- Шуляк Б. Ф. Распространение и диагностика африканской чумы свиней // Рос. вет. журн. - 2008. - № 3. - С. 36-38.
- DeTray D. E., Scott G. R. Blood changes in swine with African swine fever // Am. J. Vet. - 1957. - Vol. 18. - P. 484-497.
- Epstein L. B., Brecher G. DNA and RNA synthesis of circulating atypical lymphocytes in infectious mononucleosis // Blood. - 1965. - Vol. 25. - P. 197-2003.
- Genovesi E. V., Knudsen R. C., Whyard T. C., Mebus C. A. Moderately virulent African swine fever virus infection: blood cell changes and infective virus distribution among blood components // Am. J. Vet. Res. - 1988. - Vol. 49, N 3. - P. 338-344.
- Gomez-Villamandos J. C., Hervas J., Mendez A. et al. Experimental African swine fever: apoptosis of lymphocytes and virus replication in other cells // J. Gen. Virol. - 1995. - Vol. 76. - P. 2399-2405.
- Gomez-Villamandos J. C., Bautista M. J., Carrasco L. et al. African swine fever virus infection of bone marrow: Lesions and pathogenesis // Vet. Pathol. - 1997. - Vol. 34. - P. 97-107.
- Granja A. G., Nogal M. L., Hurtado C. et al. Modulation of p53 cellular function and cell death by African swine fever virus // J. Virol. - 2004. - Vol. 78, N 13. - P. 7165-7174.
- Horwitz D. A., Stastny P., Ziff M. Circulating deoxyribonucleic acid-synthesizing mononuclear leukocytes. I. Increased numbers of proliferating mononuclear leukocytes in inflammatory disease // J. Lab. Clin. Med. - 1970. - Vol. 76. - P. 391-402.
- Romeis B. Mikroskopische Technik. - Munich, 1948.
- Rowlands R. J., Michaud V., Heath L. et al. African swine fever virus isolate, Georgia // Emerg. Infect. Dis. - 2008. - Vol. 14, N 12. - P. 1870-1874.
- Simon M. W. The atypical lymphocyte // Int. Pediatr. - 2003. - Vol. 18, N 1.
- Wardley R. C., Wilkinson P. J. The association of African swine fever virus with blood components of infected pigs // Arch. Virol. - 1977. - Vol. 55. - P. 327-334.
- Wardley R. C., Wilkinson P. J., Hamilton F. African swine fever virus replication in porcine lymphocytes // J. Gen. Virol. - 1977. - Vol. 37. - P. 425-427.