Genetic characterization of the Geran virus (GERV, Bunyaviridae, Nairovirus, Qalyub group) isolated from the ticks Ornithodoros verrucosus Olenev, Zasukhin and Fenyuk, 1934 (Argasidae) collected in the burrow of Meriones erythrourus Grey, 1842 in Azerbaijan


Cite item

Full Text

Abstract

The full-length genome of the unclassified Geran virus (GERV, strain LEiV-10899Az) isolated from the ticks (Ornithodoros verrucosus Olenev, Zasukhin and Fenyuk, 1934 (Argasidae, Ornithodorinae)) collected in the burrow of the red-tailed gerbils (Meriones (Cricedidae) erythrourus Grey, 1842) near the Geran station (Azerbaijan) was sequenced using the next-generation approach (GenBank ID: KF801649). it was shown that the GERV is a new representative of the Nairovirus genus (family Bunyaviridae). The comparative analysis of the full-length genome sequences of the GERV with other nairoviruses showed that the highest level of homology (55.6% for N protein (s-segment) of 54.2% for the polyprotein Gn/Gc (M-segment) and 74.8% for the RNA-dependent RNA polymerase (L-segment)) GERV had with the Chim virus (CHIMV) that is also associated with the shelters biocenoses (rodent burrows) in Central Asia and was previously assigned to the Qalyub virus group (QYBV). Comparing the GERV with the QYBV sequences (partial sequence 413 n.o. of RdRp gene) revealed a high level of homology: 74.3 and 97.4% for the nucleotide and amino acid sequences, respectively. The data obtained in this work provided an opportunity to classify the GERV to the QYBV group; the Nairovirus genus, to the family Bunyaviridae.

Full Text

В процессе проведения вирусологического мониторинга [1-4] в Закавказье из пула клещей Ornithodoros verrucosus Olenev, Zasukhin and Fenyuk, 1934 (Argasidae, Ornithodorinae), собранных в норе краснохвостой песчанки Meriones (Cricedidae) erythrourus Grey, 1842 в окрестностях станции Герань Касум-Исмаиловского района Азербайджана (40°30’N, 46°40’E), изолирован вирус Герань (Geran virus - GERV, штамм LEIV-10899- Az), который не удалось идентифицировать серологическими методами. В настоящей работе для идентификации GERV проведено полногеномное секвенирование его генома и показано, что GERV является новым членом рода Nairovirus (сем. Bunyaviridae) и относится к группе Qalyub. Материалы и методы Вирусные штаммы. Штамм LEIV-10899Az GERV получен из Государственной коллекции вирусов при ФГБУ «НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского» Минздрава России. Работы с инфекционным материалом, связанные с получением и накоплением вируса, проводили в боксовых помещениях, оборудованных и сертифицированных для работы с микроорганизмами II группы патогенности. Для восстановления вируса лиофили- зированную суспензию восстановили в 1 мл культуральной среды ДМЕМ (с добавлением антибиотика) и использовали для интрацеребрального заражения новорожденных беспородных белых мышей. После развития симптомов поражения ЦНС (2-3 сут) мышей забивали в соответствии с правилами содержания и использования лабораторных животных. Выделение РНК. Фрагменты мозга (около 30 мг) помещали в 1 мл реагента TRIzol (Life Technology, США) и гомогенизировали пластиковым пестиком. Далее выделяли РНК согласно прилагаемой инструкции производителя данного реагента. Конечный осадок суммарной РНК растворяли в 100 мкл DEPC-обработанной воды. Для дополнительной очистки, а также для удаления низкомолекулярных фракций рибосомальной (5 S) и транспортной РНК полученный препарат был очищен набором «RNeasy mini kit» (QIAGEN, Германия) в режиме clean-up на автоматической станции QIAcube (QIAGEN, Германия) в соответствии с инструкцией. Концентрацию РНК измеряли с использованием флюориметра Qubit (Invitrogen, США). Для удаления рибосомальной (18 и 28 S) РНК использовали набор «GenRead rRNA depletion Kit» (QIAGEN, Германия) в соответствии с инструкцией. Для этого брали не более 3 мкг суммарной РНК. Эффективность деплеции достигала 50-80%, и, таким образом, количество полученной РНК для дальнейшего анализа составило около 300 нг. Подготовка ДНК-библиотек и секвенирование. Для получения кДНК около 100 нг деплецированной РНК фрагментировали в 15 мкл реакционной смеси для обратной транскриптазы с гексапраймером при 85°С в течение 5 мин, после чего помещали в лед. К фрагментированной РНК добавляли 200 ед. фермента RevertAid Premium (Thermo Scientific, США) и 20 ед. ингибитора РНаз RNasin (Promega, США). Инкубировали при 25°С в течение 10 мин, далее при 42°С в течение 60 мин. Реакцию останавливали прогреванием при 70°С в течение 10 мин. Синтез второй цепи кДНК проводили с использованием набора «NEBNext® mRNA Second Strand Synthesis Module» (NEB, США) в соответствии с инструкцией. Полученную дцДНК очищали с помощью набора «MinElute PCR Purification Kit» (QIAGEN, Германия) на автоматической станции QIAcube. Для получения ДНК-библиотек из дцДНК использова- Таблица 1 Вирусы рода Nairovirus (Bunyaviridae), изолированные в Закавказье, Средней Азии, Казахстане и высоких широтах [17-19] Вирус Группа GenBankID Тип биоценоза Источник выделения Известный ареал Ссылка Крымской-Конго геморрагической лихорадки (CCHFV) CCHFV NC005300- NC005302 Пастбищный Клещи Hyalomma spp., преимущественно H.marginatum; ежи; зайцы; грызуны; домашние животные; человек Средняя Азия, Казахстан, Закавказье, Юг Европы, Африка [20-22] Хазара (Hazara virus - HAZV) M86624, DQ076419 Клещи Ixodidae Средняя Азия [23] Чим (Chim virus - CHIMV) Qalyub KF801656 Убежищный Клещи Ornithodoros tartakovskyi, O. papillipes, Rhipicephalus turanicus Hyalomma asiaticum; большая песчанка Rhombomys opimus То же [10] Герань (Geran virus - GERV) KF801649 Клещи Ornithodoros verrucosus Закавказье Данная статья Сахалин (Sakhalin virus - SAKHV) Sakhalin KF801659 Гнездовья морских птиц Клещи Ixodes uriae Высокие широты [24] Парамушир (Paramushir virus - PRMV) KF801657 Тамды (Tamdy virus - TAMV) Tamdy KF801653 Пастбищный Клещи Hyalomma asiaticum и H. spp, Rhipicephalus turanicus, Haemophysalis concinna; песчанки; птицы; человек Средняя Азия, Казахстан, Закавказье [8, 25] Бурана (Burana virus - BURV) KF801651 Клещи Haemaphysalis punctate, Haem. concinna Средняя Азия [26, 27] Каспий (Caspiy virus - CASV) Hughes KF801659 Гнездовья морских птиц Клещи Ornithodoros capensis; чайки Larus argentatus Восточное и западное побережье Каспийского моря [9] Иссык-Куль (Issyk-Kul virus - ISKV) Issyk-Kul KF801652 Убежищный Летучие мыши (Vespertilionidae); клещи Argasidae; птицы; человек Средняя Азия, Малайзия [6, 28] Узун-Агач (Uzun- Agach - UZAV KJ744032 Летучая мышь Myotis blythii Средняя Азия - Арташат (Artashat virus - ARTSHV) Artashat KF801650 Убежищный Клещи Ornithodoros alactagalis, O. verrucosus Закавказье [7] Sakhalin Artashat Dugbe el 1 V -Г1 00 I-I CCHFV | Thiafora | Qalyub | Hughes 100 Tamdy Результаты филогенетического анализа, проведенного методом ближайшего соседа на основе выравненных аминокислотных полноразмерных последовательностей протеинов вирусов рода Nairovirus. а - РНК-зависимая RdRp (L-сегмент); б - полипротеин Gn/Ge (M-сегмент); в - белок N (S-сегмент). Положение на дендрограмме GERV обозначено кружком. a - Paramushir virus 1149Prm - Sakhalin virus 71C С Artashat virus 9000 Artashat virus 2236 Dugbe virus NC004159 Dugbe virus U15018 ■ Kupe virus EU257628 ■ Nairobi sheep disease virus EU6979S1 Nairobi sheep disease virus EU697949 - Hazara virus mo | Crimean-Congo HF virus FJ562095 ■ Crimean-Congo HF virus GU477492 I- Crimean-Congo HF virus NC005301 - Crimean-Congo HF virus HM4S2307 - Crimean-Congo HF virus AY720893 Erve virus - Issyk-Kul - # Geran virus - Chim virus - Caspiy virus [ Tamdy LEIV-Ar6158 Tamdy LEIV-1308 Tamdy LEIV-10228 - Burana virus Bunyamwera virus X14383 ли набор «TruSeq DNA Sample Prep Kits v2» (Illumina, США) в соответствии с инструкцией. Для селекции ДНК по размеру использовали реагент «AMpure XP» (Beckman Coulter, США) с расчетом получения ДНК- библиотек длиной более 270 н.о., что соответствует размеру вставки около 150 н.о. Данные требования к размеру ДНК-библиотек связаны с использованием для секвенирования набора, позволяющего секвени- ровать не более 150 н.о. в одну сторону. Полученные библиотеки визуализировали на станции автоматического электрофореза «QIAxcel Advanced System» (QIAGEN, Германия). Молярность полученных библиотек измеряли методом полимеразной цепной реакции в реальном времени (2х SsoFast EvaGreen Supermix (Bio-Rad, США), прибор Bio-Rad CFX1000) согласно рекомендациям, изложенным в руководстве «Sequencing Library qPCR Quantification Guide» (Illumina, США). Секвенирование ДНК-библиотек осуществляли на приборе MiSeq (Illumina, США) с использованием набора «MiSeq Reagent Kits V2 (300PE)» в соответствии с инструкцией производителя. Биоинформационный анализ. Обработку данных полногеномного секвенирования, сборку контигов и картирование ридов проводили, используя программу «CLC Genomics Workbench 6.0» (CLC bio, США). Предварительный поиск гомологичных последовательностей проводили с помощью сервиса BLASTX (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov). Для анализа нуклеотидных и аминокислотных последовательностей использовали пакет программ «Lasergene Core Suite» (DNAstar, США). Выравнивание последовательностей осуществляли по алгоритму ClustalW. Филогенетический анализ и построение дендрограмм проводили с использованием программы Mega5 по алгоритму ближайшего соседа (neighbor-joining) или максимального правдоподобия (Maximum likelihood) с 1000-кратным бутстреп-тестированием. Результаты и обсуждение Для анализа результатов полногеномного секвени- рования полученные короткие последовательности 150 н.о. длиной (риды, от англ. reads) были собраны de novo в более длинные фрагменты (контиги, от англ. contigs sequences) с использованием ассемблера программы «CLC Genomics Workbench 6.0» (CLC bio, США). Полученные контиги предварительно анализировали с использованием on-line сервиса BLASTX (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov), который позволяет проводить поиск гомологичных белков в базе данных GenBank, используя для запроса нуклеотидные последовательности, транслируемые в автоматическом режиме. Поиск гомологий проводился с ограничением по поиску «viruses (taxid:10239)». В результате обнаружили три последовательности длиной 12,02, 4,973 и 2,272 н.о. соответственно, открытые рамки считывания которых кодируют белки, обладающие гомологией с вирусами рода Nairovirus (Bunyaviridae). Результаты дальнейшего анализа показали, что мы определили практически полные нуклеотидные последовательности генома GERV, который, как и у всех наировиру- сов, представлен тремя сегментами РНК отрицательной полярности, которые кодируют РНК-зависимую РНК-полимеразу (RdRp; L-сегмент), полипротеин- предшественник оболочечных гликопротеидов Gn/ Gc (M-сегмент) и белок нуклеокапсида (N, S-сегмент) соответственно (GenBank ID: KF801649). Структура генома GERV и размер кодируемых белков также соответствуют таковым вирусов данного рода [5]. Таблица 2 Уровень идентичности (в %; рассчитанный на основе генетической дистанции - p-distance) полноразмерных последовательностей белков вируса GERV с вирусами рода Nairovirus Серо- Вирус RdRp GLGn N группа (L-сегмент) (М-сегмент) (S-сегмент) CCHFV Крымской-Конго 51,4 30,2 40,9 геморрагической лихорадки (CCHFV - Crimean-Congo hemorrhagic fever virus) Sakhalin Сахалин (SAKHV - Sakhalin virus) 52,2 30,0 36,2 Dugbe Дугбе (DUGV - Dugbe virus) 51,3 27,5 38,2 Thiafora Ерве (ERVEV - Erve virus) 48,1 28,3 33,3 Issyk- Kul Иссык-Куль (ISKV - Issyk-Kul virus) 62,3 45,1 42,4 Hughes Каспий (CASV - Caspiy virus) 51,0 29,3 30,3 Tamdy Тамды (TAMV - Tamdy virus) 48,2 29,2 37,0 Artashat Арташат (ARTSV - Artashat virus) 50,8 33,8 36,9 Qalyub Чим (CHIMV - Chim virus) 74,8 54,2 55,6 Согласно последнему изданию отчета Международного комитета по таксономии вирусов (ICTV), к роду Nai- rovirus отнесено около 35 вирусов, которые объединены в семь серогрупп (видов) [5]. Ранее нами показано, что ряд неклассифицированных буньявирусов, преимущественно изолированных в Закавказье, Средней Азии и Казахстане, являются новыми представителями данного рода (табл. 1) [6-9]. Результаты сравнительного анализа полноразмерных аминокислотных последовательностей генома GERV с другими наировирусами также представлены в табл. 1. В среднем уровень гомологии составляет 30-40% по белку N, 27-33% по полипротеину Gn/Gc и 48-52% по последовательности RdRp. Наибольший уровень гомологии GERV по всем трем белкам отмечен для вируса Иссык-Куль (Issyk-Kul virus - ISKV) (42,4-62,3%) и вируса Чим (Chim virus - CHIMV) (54,2-74,8%) (табл. 2). Ранее CHIMV был отнесен к серогруппе Кальюб (Qalyub) рода Nairovirus на основании анализа генома, а также общих экологических свойств (приуроченность к убежищным биоценозам - норам грызунов) с вирусами данной серогруппы [10]. Для вируса Кальюб (Qalyub virus - QYBV), который является прототипным вирусом одноименной группы, в настоящее время доступна только частичная последовательность (413 н.о.) гена RdRp (AY359528). Этот участок RdRp является наиболее консервативным у наировирусов и используется для филогенетического анализа [11]. Уровень гомологии GERV с QYBV по нуклеотидной последовательности части консервативного каталитического центра составил 74,3%. Гомология аминокислотных последовательностей GERV и QYBV на данном участке составляет 97,1%. Полученные данные позволяют классифицировать GERV как вирус группы QYBV (см. рисунок). QYBV впервые изолирован R. Taylor и H. Dressler из клещей Ornithodoros erraticus, собранных в норе в дельте Нила в окрестностях пос. Кальюб, Египет (30°N, 32°E) в 1952 г. Комплементсвязывающие антитела к QYBV найдены у людей (1,5%), верблюдов, ослов, свиней, буйволов, собак, грызунов. Антигенная группа Qalyub, которая сформирована QYBV и антигенно близкими ему вирусами, является одной из прототипных групп рода Nairoviurus сем.Bunyaviridae [12-15]. Филогенетическая близость GERV к QYBV, а также к CHIMV, изолированному от клещей Ornithodoros tartakovskyi Olenev, 1931 в убежищных биоценозах (норы большой песчанки Rhombomys opimus Lichtenstein, 1823) в Средней Азии и Казахстане, определяет потенциальную возможность заражения GERV людей. Ареал клещей O. verrucosus Olenev, Zasukhin and Fenyuk, 1934 (Argasidae, Ornithodorinae) охватывает юг Молдавии, Украины, Кавказа, ограничен на севере 47°30’ в западной части и 43°30’. Ареал включает юг Краснодарского и Ставропольского краев, Северные и Восточные предгорья Дагестана, предгорья и равнинные возвышенности Грузии, в Армении долины рек Аране и Раздан, в Азербайджане предгорья Малого Кавказа, Кобыстанское плато и Апшеронский полуостров. На этих территориях нельзя исключать существование природных очагов GERV. Клещи O. verrucosus заселяют убежищные биотопы, в частности норы краснохвостой песчанки Meriones (Cricedidae) erythrourus Grey, 1842, распространенной в Средней Азии, на Юге Казахстана и в Восточном Закавказье. Данный вид, сформировавшийся в конце среднего плиоцена, тяготеет к пустынным и полупустынным ландшафтам. Глубокие, с 5-10 выходными отверстиями норы Meriones erythrourus обеспечивают стабильность адаптированных к ним биоценозов. Вирусологическое обследование территории Закавказья проводили в рамках программы биобезопасности и изучения биоразнообразия в разных экосистемах Северной Евразии, а также для пополнения Государственной коллекции вирусов [1, 3, 16].
×

References

  1. Lvov D.K. Ecological soundings of the former USSR territory for natural foci of arboviruses. In: Sov. Med. Rev. Virol. UK: Harwood Academ. Pub. GmbH; 1993: 1-47.
  2. Львов Д.К. Экология вирусов. В кн.: Львов Д.К., ред. Вирусы и вирусные инфекции. М.: МИА; 2013: 66-86.
  3. Щелканов М.Ю., Громашевский В.Л., Львов Д.К. Роль эколого-вирусологического районирования в прогнозировании влияния климатических изменений на ареалы арбовирусов. Вестник РАМН. 2006; 2: 22-5.
  4. Львов Д.К., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Бутенко А.М., Галкина И.В., Громашевский В.Л. и др. Атлас распространения возбудителей природно-очаговых вирусных инфекций на территории Российской Федерации. М.; Издательство НПЦ ТМГ МЗ РФ; 2001.
  5. Plyusnin A., Beaty B.J., Elliot R.M., Goldbach R., Kormelink R., Lundkvist A. et al. Family Bunyaviridae. In: King A.M., Adams M.J., Carstens E.B., Lefkowitz E.J., eds. Virus taxonomy: classification and nomenclature of viruses: 9th Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. London: Elsevier; 2012: 725-41.
  6. Альховский С.В., Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Самохвалов Е.И. и др. Таксономия вируса Иссык-Куль (Issyk-Kul virus, ISKV; Bunyaviridae, Nairovirus), возбудителя Иссык-Кульской лихорадки, изолированного от летучих мышей (Vespertilionidae) и клещей Argas (Carios) vespertilionis (Latreille, 1796). Вопросы вирусологии. 2013; 58(5): 11-5.
  7. Альховский С.В., Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Гительман А.К. и др. Таксономия вируса Арташат (ARTSV - Artashat virus) (Bunyaviridae, Nairovirus), изолированного из клещей Ornithodoros alactagalis Issaakjan, 1936 и O. verrucosus Olenev, Sassuchin et Fenuk, 1934 (Argasidae Koch, 1844), собранных в Закавказье. Вопросы вирусологии. 2014; 59(3): 24-8.
  8. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Аристова В.А., Гительман А.К. и др. Таксономия ранее негруппированного вируса Тамды (TAMV - Tamdy virus) (Bunyaviridae, Nairovirus), изолированного от иксодовых клещей Hyalomma asiaticum asiaticum Schulce et Schlottke, 1929 (Ixodidae, Hyalomminae) в Средней Азии и Закавказье. Вопросы вирусологии. 2014; 59(2): 15-22.
  9. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Самохвалов Е.И. и др. Генетическая характеристика вируса Каспий (CASV - Caspiy virus) (Bunyaviridae, Nairovirus), изолированного от чайковых (Laridae Vigors, 1825) и крачковых (Sternidae Bonaparte, 1838) птиц и аргасовых клещей Ornithodoros capensis Neumann, 1901 (Argasidae Koch, 1844) на западном и восточном побережьях Каспийского моря. Вопросы вирусологии. 2014; 59(1): 24-9.
  10. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Аристова В.А., Морозова Т.Н. и др. Таксономия ранее неклассифицированного вируса Чим (CHIMV - Chim virus) (Bunyaviridae, Nairovirus, группа Кальюб), изолированного в Узбекистане и Казахстане из иксодовых (Acari: Ixodidae) и аргасовых (Acari: Argasidae) клещей, собранных в норах больших песчанок Rhombomys opimus Lichtenstein, 1823 (Muridae, Gerbillinae). Вопросы вирусологии. 2014; 59(3): 18-23.
  11. Honig J.E., Osborne J.C., Nichol S.T. The high genetic variation of viruses of the genus Nairovirus reflects the diversity of their predominant tick hosts. Virology. 2004; 318(1): 10-6.
  12. Clerx J.P., Bishop D.H. Qalyub virus, a member of the newly proposed Nairovirus genus (Bunyavividae). Virology. 1981; 108(2): 361-72.
  13. Miller B.R., Loomis R., Dejean A., Hoogstraal H. Experimental studies on the replication and dissemination of Qalyub virus (Bunyaviridae: Nairovirus) in the putative tick vector, Ornithodoros (Pavlovskyella) erraticus. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1985; 34(1): 180-7.
  14. Bishop D.H., Calisher C.H., Casals J., Chumakov M.P., Gaidamovich S.Y., Hannoun C. et al. Bunyaviridae. Intervirology. 1980; 14(3-4): 125-43.
  15. QALYUB. In: Karabatsos N., ed. International catalogue of arboviruses including certain other viruses of vertebrates. San Antonio, Texas: Am. Soc. Trop. Med. Hyg.; 1985: 847.
  16. Львов Д.К., ред. Организация эколого-эпидемиологического мониторинга территорий Российской Федерации с целью противоэпидемической защиты населения и войск. Методические рекомендации. М.: МЗ РФ, Федеральное управление медикобиологических и экстремальных проблем, НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского РАМН; 1993.
  17. Lvov D.K. Arboviral zoonoses of Northern Eurasia (Eastern Europe and the commonwealth of independent states). In: Beran G.W., ed. Handbook of zoonoses. Sec. ed. Section B: Viral. London, Tokyo: CRC Press; Boca Raton: AMArbar; 1994: 237-60.
  18. Lvov D.K. Arboviruses in the USSR. In: Vasenjak-Hirjan J., Porterfield J.S., eds. Arboviruses in the mediterranean countries. New York: Gustav Fischer Verlag; 1980: 35-48.
  19. Lvov D.K. Natural foci of arboviruses in the USSR. In: Zhdanov V.M., ed. Sov. Med. Rev. Virol. UK: Harwood Academ. Pub. GmbH; 1987: 153-96.
  20. Yashina L., Petrova I., Seregin S., Vyshemirskii O., Lvov D., Aristova V. et al. Genetic variability of Crimean-Congo haemorrhagic fever virus in Russia and Central Asia. J. Gen. Virol. 2003; 84(Pt 5): 1199-206.
  21. Seregin S.V., Tumanova I.Y., Vyshemirski O.I., Petrova I.D., Lvov D.K., Gromashevski V.L. et al. Study of the genetic variability of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in Central Asia. Dokl. Biochem. Biophys. 2004; 398: 313-5.
  22. Kuhn J.H., Seregin S.V., Morzunov S.P., Petrova I.D., Vyshemirskii O.I., Lvov D.K. et al. Genetic analysis of the M RNA segment of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus strains involved in the recent outbreaks in Russia. Arch. Virol. 2004; 149(11): 2199-213.
  23. Marriott A.C., Nuttall P. A. Comparison of the S RNA segments and nucleoprotein sequences of Crimean-Congo hemorrhagic fever, Hazara, and Dugbe viruses. Virology. 1992; 189(2): 795-9.
  24. Lvov D.K., Timofeeva A.A., Gromashevski V.L., Chervonsky V.I., Gromov A.I., Tsyrkin Y.M. et al. «Sakhalin» virus-a new arbovirus isolated from Ixodes (Ceratixodes) putus Pick.-Camb. 1878 collected on Tuleniy Island, Sea of Okhotsk. Arch Gesamte Virusforsch. 1972; 38(2): 133-8.
  25. Lvov D.K., Sidorova G.A., Gromashevsky V.L., Kurbanov M., Skvortsova L.M., Gofman Y.P. et al. Virus «Tamdy»-a new arbovirus, isolated in the Uzbee S.S.R. and Turkmen S.S.R. from ticks Hyalomma asiaticum asiaticum Schulee et Schlottke, 1929, and Hyalomma plumbeum plumbeum Panzer, 1796. Arch Virol. 1976; 51(1-2): 15-21.
  26. Карась Ф.Р., Львов Д.К., Варгина С.Г., Громашевский В.Л., Стеблянко С.Н., Колпаков В.Н. Изоляция нового для науки вируса Бурана из клещей Haemaphysalis punctata в северном климатическом районе Киргизии. В кн.: Львов Д.К., ред. Экология вирусов. М.; 1976: 94-7.
  27. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Гительман А.К. и др. Таксономический статус вируса Бурана (BURV - Burana virus) (Bunyaviridae, Nairovirus, группа Тамды), изолированного из клещей Haemaphysalis punctata Canestrini et Fanzago, 1877 и Haem. concinna Koch, 1844 (Ixodidae, Haemaphysalinae) в Киргизии. Вопросы вирусологии. 2014; 59(4): 10-5.
  28. Lvov D.K., Karas F.R., Timofeev E.M., Tsyrkin Y.M., Vargina S.G., Veselovskaya O.V. et al. Issyk-Kul virus, a new arbovirus isolated from bats and Argas (Carios) vespertilionis (Latr., 1802) in the Kirghiz S.S.R. Brief report. Arch Gesamte Virusforsch. 1973; 42(2): 207-9.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2014 Lvov D.K., Alkhovsky S.V., Shchelkanov M.Y., Deryabin P.G., Shchetinin A.M., Samokhvalov E.I., Aristova V.A., Gitelman A.K., Botikov A.G.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-77676 от 29.01.2020.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies