Analysis of the Cell Tissue Culture Contamination with the Bovine Viral Diarrhea Virus and Mycoplasmas

Full Text

Создание способов культивирования соматических клеток вне организма в искусственных питательных средах оказало огромное влияние на развитие исследований биологии клетки и прикладное применение полученных знаний в вирусологии, что привело к принципиальным изменениям методов масштабного культивирования клеток, используемых для диагностики вирусных инфекций, выделения и идентификации вирусов. Контроль качества клеточных линий, применяемых как субстраты при создании живых вакцин и инновационных разработок с использованием стволовых клеток, сегодня приобретает особое значение [4]. Одним из главных компонентов питательных сред являются сыворотки крови крупных животных (чаще всего крупного рогатого скота - КРС), которые могут быть контаминированы возбудителями вирусных инфекций с хроническим и/или латентным течением (пестивирусы, вирусы репродуктивного и респираторного заболевания КРС, лейкоза коров, герпесви-русы, аннеловирусы и др.) [8, 9, 18]. Отсутствие постоянного контроля за производственными партиями сывороток приводит к контаминации клеточных линий присутствующими в сыворотках КРС разными патогенами. Из вирусных патогенов наиболее часто клеточные линии контаминированы пестивирусом BVDV (bovine viral diarrhea virus) - вирусом диареи - болезни слизистых оболочек КРС [30]. В последние 15-20 лет пестивирусные инфекции широко распространились в крупных животноводческих хозяйствах мира (Европа, Америка, Австралия, Япония) [16, 18, 23] и нашей страны [1-3, 7]. В ряде случаев BVDV рассматривается как эндемичный патоген для отдельных регионов и даже стран [13, 21, 29], а инфицированность поголовья КРС в отдельных хозяйствах достигает 70-90%. Чаще стали появляться также сообщения о контаминации клеточных культур этими вирусами, в том числе атипичными формами (HoBi- подобными) [10, 29]. Пестивирусные заболевания относятся к новым и возвращающимся инфекциям [23, 27]. Вирус диареи - болезни слизистых оболочек КРС - BVDV (семейство Flaviviridae, род Pestivirus) вызывает заболевания молодых и взрослых животных, передается контактным (в том числе со слюной), половым и путем in utero [12]. Имеется сообщение о выявлении вируса даже в объединенных пробах молока от коров (bulk tank milk) [16]. Симптоматика инфекции весьма разнообразна: от субклинических форм персистентной инфекции до острого поражения слизистой оболочки кишечника, острой диареи, острого геморрагического синдрома, тяжелой пневмонии, пирексии, анорексии, нарушения развития плода; в исходе -иммуносупрессия, иногда летальный исход [1]. Выделяют два основных генотипа BVDV, каждый из которых в зависимости от действия на клетку встречается в виде двух биотипов, - цитопатогенно-го (cp-BVDV 1 и cp-BVDV 2) и нецитопатогенного (non-cp-BVDV 1 и non-cp-BVDV 2). Только биотип non-cp-BVDV вызвает внутриутробное заражение плода, у которого персистентная инфекция развивается в случае его инфицирования еще до созревания адаптивной иммунной системы [12]. Вирионы BVDV диаметром 60-70 нм имеют липидную оболочку с встроенными в нее гликопротеинами Ек^ (gp44/48), E1 (gp33), E2 (gp55). Одноцепочечная положительной полярности геномная РНК (-12,5 kb в длину) кодирует вирусный полипротеин (~3900 а.о.), нарезающийся ко- и посттрансляционно клеточными и вирусными протеазами. Маркерами для обнаружения BVDV-инфекции в клетках и сыворотках крови являются специфические антитела, белки вириона и геномная РНК [12]. Микоплазмы. Среди разных видов бактерий микоплазмы (класс Mollicutes) имеют наименьшую величину генома, лишены оболочки, а виды родов Mycoplasma и Acholeplasma часто контаминируют первичные и перевиваемые клеточные линии [11]. Они могут продолжительное время персистировать в клетках эукариот без признаков клеточной патологии, а в организме человека вызывают различные воспалительные синдромы [21]. Несмотря на меры предосторожности и систематический мониторинг, микоплазму периодически выявляют в клеточных субстратах, ветеринарных и медицинских вирусных препаратах и вакцинах [25, 26]. Сообщается, что исследование 200 коллекционных клеточных линий человека, обезьян, мышей, хомячков и крыс с использованием ОТ-ПЦР с универсальными праймерами позволило выявить контаминацию до 20% клеток разными видами микоплазм [14]. Следствием инфекции микоплазмами являются снижение пролиферации клеток, нарушение продукции интерферонов и других цитокинов, замедленное формирование монослоя, агглютинация при культивировании клеток в суспензии. Отсутствие сформированной клеточной стенки обеспечивает длительную персистенцию микоплазмы в клетке с накоплением до более 1000 частиц/кл. Для обнаружения микоплазм в клеточных культурах используют цитохимические методы, а в последние годы - метод полимеразной цепной реакции [22]. Проведено исследование произвольно выбранных образцов клеточных линий и отвивок из коллекций клеточных культур Института вирусологии им.Д.И.Ивановского (коллекция включена в каталог Всесоюзной коллекции клеточных культур (1991) и Европейский каталог клеточных линий человека и животных (1993), а также из других источников, включая привезенные из-за рубежа, с целью анализа их контаминации двумя наиболее часто встречающимися патогенами: вирусом диареи - болезни слизистых оболочек коров BVDV и микоплазмами, вызывающими хроническую инфекцию клеток без развития цитопатического эффекта, что затрудняет их обнаружение неспецифическими морфологическими методами. Наша работа выполнена в рамках контроля качества клеточных линий разного происхождения с целью обозначить масштабы контаминации клеточных линий разных видов животных и разных типов тканей. Материалы и методы Клеточные линии. В случае использования моно-слойной культуры, клетки предварительно трижды промывали TN-буфером (0,01 М трис-НС рН 7,2 и 0,14 М NaCl), затем отмывали раствором версена с добавлением хемопсина для отслоения клеток от подложки, осаждали их центрифугированием при 40С в течение 5-7 мин при 1000-1500 об/мин. Осадок клеток ресуспендировали в 5 мл TN-буфера. Осаждение - ресуспендирование клеток повторяли 3 раза. Затем к осадку клеток добавляли 500 мкл 0,14 M NaCl и равный объем лизирующего буфера из набора «Ветбио-хим». Клетки, хранившиеся в жидком азоте (стандартная концентрации 500 000 кл/мл), быстро размораживали при 370С, трижды отмывали 5-кратным объемом среды 199, подсчитывали в камере Горяева, а затем лизировали для последующего выделения РНК. Выделение РНК. Суммарную РНК выделяли из монослоя клеток с использованием неорганического носителя и набора для выделения «тест-системы для обнаружения вируса диареи (ВД) крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции (ПЦР)» («Ветбиохим», Россия) по методике производителя. Для выделения вирусной РНК из эмбриональных телячьих сывороток (ЭТС) КРС использовали по 50-100 мкл сыворотки, применяя тризол согласно методике производителя («Sigma», Германия). Суммарную ДНК выделяли из монослоя клеток, после их отслоения от подложки и осаждения при 40С в течение 10 мин и 1500 об/мин. Затем клетки суспендировали в 200 мкл 0,14 M NaCl и добавляли 600 мкл лизирующего буфера из набора «Ветбиохим», (Россия), далее - по методике производителя. Амплификация генома ВД. Для выявления генома ВД КРС использовали «тест-систему для обнаружения вируса диареи (ВД) крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции». ОТ-ПЦР проводили в конечном объеме 25 мкл. Реакционная смесь содержала 5 мкл РНК, 10 пмоль каждого праймера для ПЦР-I, 0,25 мМ каждого dNTP, 2,5 ед. Taq-полимеразы, 10 мМ трис-HCl (рН 9,0), 50 мМ KCl, 0,1% тритон X-100, 1,5 мМ MgCl2. Использовали следующие параметры ПЦР: (50оС - 50 мин, 94оС - 5 мин) - 1 цикл, (94оС - 20 с, 55оС - 20 с, 72оС - 20 с) - 30 циклов (94оС - 20 с, 55оС - 20 с, 72оС - 5 мин) - 1 цикл. После ОТ-ПЦР проводили второй раунд амплификации. ПЦР-II выполняли в конечном объеме 25 мкл. Реакционная смесь содержала 5 мкл продукта ОТ-ПЦР, 10 пмоль каждого праймера для ПЦР-II, 0,25 мМ каждого dNTP, 2,5 ед. Taq-полимеразы, 10 мМ трис-HCl (рН 9,0), 50 мМ KCl, 0,1% тритон X-100, 1,5 мМ MgCl Использовали следующие параметры ПЦР: (94оС - 20 с, 55оС - 20 с, 72оС - 20 с) - 30 циклов, (94оС - 20 с, 55оС - 20 с, 72оС - 5 мин) - 1 цикл. ПЦР для выявления ДНК микоплазм. Обнаружение микоплазм hominis, laidlawii и arginini в клеточных линиях, проводили, используя готовую тест-систему «ЛТПФ ДНК-технология», в объеме 25 мкл. Реакционная смесь содержала 5 мкл ДНК, 10 пмоль каждого праймера, 0,25 мМ каждого dNTP, 2,5 ед. Taq-полимеразы, х10 ПЦР-буфер. Программа амплификации: (940 С - 1 мин) - 1 цикл; (940 С - 30 с, 550 С - 25 с, 720 С - 30 с) - 30 циклов. Электрофорез в агарозном геле. Результаты ПЦР анализировали методом гель-электрофореза, используя трис-ацетатный буфер, содержащий бромистый этидий в концентрации 0,4-0,5 мкг/мл. Гели анализировали, используя транс-иллюминатор с ультрафиолетовым светом при X 254 нм. Размер фрагментов ПЦР после анализа составлял 264 п. н. (для BVDV), чувствительность использованного метода - более10 геном-экв/мкл. В случае анализа микоплазм величина фрагментов ПЦР при использовании пары праймеров GPO3/ MGSO вставляла 288 п. н., для праймеров GPOl/ Uni - 472 п. н. и 724 п. н. - для пары праймеров GPOl/MGSO. Выявление вирусного антигена в клетках, фиксированных холодным ацетоном на стекле, проводили с помощью реакции непрямой иммунофлюоресценции (РНИФ) с использованием специфических моноклональных антител к Е1 гликопротеину оболочки BVDV и антивидовых аффинно-очищенных IgG-антител, меченных ФИТЦ («Sigma», Германия). Электронная микроскопия. В некоторых случаях (для оценки корреляции эффективности детекции вируса разными методами) изучали ультратонкие срезы методом электронной микроскопии [5]. Осадок суспензии клеток фиксировали 2,5% раствором глута-рового альдегида и 1% раствором OsO4, затем обезвоживали серией спиртов возрастающей концентрации и пропиленоксидом. Заливку препаратов проводили смесью эпонов по общепринятой методике, окрашивание - уранил-ацетатом. Ультратонкие срезы были получены на ультрамикротоме LKB и исследовались при помощи электронного микроскопа Jeol 100x. Оценку транскрипции генов цитокинов выполняли путем определения уровня мРНК (ИФН-а, ИФН-Р, ИФН-g ИФН-Х1, ИФН-Х2, ИФН-Х3, ИЛ-1р, ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10, ИЛ-12, ИЛ-18, ИЛ-17, ФНОа методом ОТ-ПЦР и ПЦРрв по ранее описанной методике [6]. Для определения содержания ИФН-a в культуральной жидкости использовали коммерческий набор тест-систему для определения интерферона альфа методом ИФА («Вектор Бест», Кольцово). Результаты и обсуждение В нашем предварительном сообщении [8] была отмечена высокая частота контаминации пестивирусом BVDV исследованных перевиваемых клеточных линий (включая отвивки разных лет) - до 30%. Были проанализированы клетки разного видового (человек, обезьяны, КРС, овцы, козы, собаки, мыши, крысы, хомячки) и тканевого происхождения, наиболее часто применяющиеся в вирусологических исследованиях. Суммированные результаты выявления геномной РНК вируса BVDV в исследованных на сегодня клеточных линиях приведены ниже. Основные виды проанализированных перевиваемых клеточных линий (производных разных биологических видов животных), оказавшиеся контамини-рованными, отмечены значком*. Клетки человека: (диплоидные) клетки легкого эмбриона человека - ЛЭЧ, фибробласты легкого эмбриона человека - ФЭЧ, клетки кожно-мышечной ткани - М7; А-549 - карцинома легкого, GL-6 -глиобластома, T-24 - клетки опухоли мочевого пузыря, HT29-карцинома толстой кишки, CaCo*- карцинома кишечника, GM-639 фибробласты больного галактоземией, L - клетки костного мозга больного лейкемией; HEK*- клетки почек эмбриона человека, НЕК 293т* - клетки почек эмбриона человека, клетки человека HeLa и HeLa-подобные (HEK, HeLa -карцинома шейки матки, RH - почка эмбриона человека, Hep2 - рак гортани человека, Huh-7 - клетки гепатомы, Chang conjunctiva - клетки конъюнктивы, Chang liver, Huh-7* - клетки гепатомы человека, лимфобластоидные клетки человека: Raji - лимфома Беркитта, Namalva*, Daudi, P3H3(R-1)*, Р3Н3* - все клетки лимфомы, L101* - лейкоциты крови больного лейкозом, Т1387* - Т-лимфоциты костного мозга, Molt-4 - Т-лимфоциты больного лейкемией). Клетки обезьян. Было проанализировано 11 клеточных линий. Клеточные линии почек зеленой мартышки: BGM*, CV1, Vero*, Vero Е6*, Vero(E), 4647*, GMK*, BSC1*. Клетки почек макаки резус: MA-104*, LLC-MK-2*, Frhk-4/R* (8 из 11, т.е. 72%) содержали геномную РНК BVDV. Клетки крупного рогатого скота. Среди них оказались контаминированными: МDВК* (клетки почки), РТ-80 (клетки почки телят), ПЭК* (клетки почки эмбриона коровы), ТЭБ тестикулы эмбриона быка). Клетки свиньи: PS, СПЭВ*, ППЭС. Клетки овцы: FLK*. Клетки кролика: RK*, RK82. Клетки собаки: МДСК*. Клетки кошек: cReK*, CC-81. Клетки грызунов: мышей и крыс - L929 , 3 T3 BALB/C* и др., хомячка - ВНК-21*, НАК, ВНК-BS*, CHO-K1* и др. Всего была проанализирована 131 клеточная линия (маточные культуры и отдельные отвивки), из них клетки человеческого происхождения (более 40 образцов) были контаминированы в 25% случаев (выявлена геномная РНК BVDV - отмечены значком *), клетки обезьян (более 30 проб) - более чем в 60% случаев, клетки домашних животных (более 30) - в 27 % случаев. В клетках насекомых вирус обнаружен не был, что, возможно, связано с пониженной температурой культивирования таких клеток (27-28оС). Всего вирус был выявлен в 33 % исследованных маточных линий и/или отдельных отвивок. Среди разных закладок клеток приматов геномная РНК BVDV выявлялась чаще всего. Особого внимания заслуживает не только высокая частота контаминации клеток, но и способность вируса инфицировать широкий спектр клеток разной видовой, тканевой и органной специфичности (эпителиальные, фибробластоподоб-ные, мезенхимальные клетки, клетки печени, почек, репродуктивной системы, дыхательного тракта, костного мозга, клетки крови и др.). В определенной степени это коррелирует с разнообразной патологией BVDV-инфекции у основного хозяина - КРС (поражение клеток дыхательного тракта, кроветворной системы, эпителиальных клеток кишечника, репродуктивной системы, поражение эмбриона) и описанными случаями выявления этого вируса у других видов домашних животных [1, 12]. Таким образом, впервые была показана высокая рецепторная пластичность пестивируса BVDV и его способность репродуцироваться в клетках животных, принадлежащих к разным биологическим видам, аналогично представителям рода Flavivirus семейства Flaviviridae [12]. Следует обратить внимание на то, что во всех изученных клеточных линиях цитопатический эффект не проявлялся. Результаты исследования отдельных клеточных линий и ЭТС методом ОТ-ПЦР представлены на рис. 1, а-ж (см. 2-ю полосу обложки) (электрофорез продуктов реакции). На рис.1а, в, е приведены результаты анализа различных клеточных линий. Было показано, что количество вирионной РНК (геном-эквивалентов) BVDV в разных типах клеток и разных закладках значительно варьирует: от 102 до 108 в пробе (каждая проба - 5-105 клеток). Примечательно, что более ранние маточные закладки клеток (10 лет и более назад) оказались менее контаминированными BVDV. Такая ситуация является отражением чрезвычайно широкого распространения пестивируса BVDV в крупных и мелких животноводческих хозяйствах разных стран, в том числе России, где доминирующим является вирус 1-го генотипа. Присутствие антигенов BVDV в клетках было доказано методом РНИФ (свечение вирусного гликопротеина в цитоплазме на рис. 2, а-г, см. 3-ю полосу обложки), а его генетического материала - методом ОТ-ПЦР (наличие вирионной РНК в клетках на рис.1). В некоторых случаях использовали метод электронной микроскопии ультратонких срезов клеток. Вирусные частицы сферической формы диаметром -60 нм с типичной морфологией пестивирусов были обнаружены внутри цитоплазматических вакуолей (на рис.3 ЭМ-фотография клеток MDCK). В этой же клеточной культуре получены положительные результаты РНИФ и ОТ-ПЦР. Известно, что первичным источником заражения клеток BVDV является сыворотка крови инфицированных коров [9, 16, 23], поэтому мы проанализировали 37 образцов разных партий коммерческих ЭТС производства отечественных и зарубежных фирм (разные лоты) коммерческих фирм «Биолот» (КРС), «Фуро» (КРС), «Панэко» (ЭТС), «Sigma» (ЭТС), «HyClone» (ЭТС), «Amimed» (ЭТС). Вирионная РНК BVDV была выявлена более чем в 60% случаев. По понятным причинам (см. рис. 1, ж) фирмы-производители исследованных сывороток не уточняются. На рис. 1, г, д приведены результаты исследования методом ОТ-ПЦР разных сывороток, разведенных 105-109. В случае выявления РНК BVDV в пробах сывороток ее уровни колебались от 103 до 108 геном-экв/мл. Чтобы определить время, в течение которого клетки оказываются контами-нированными BVDV за счет содержащей этот вирус ЭТС, были проведены опыты по культивированию «чистых» клеток Vero в среде Игла-MEM c 10% Рис.3. Электронно-микроскопическое изображение ультратонкого среза клетки MDCK. В цитоплазматической вакуоли клетки видны формирующиеся вирионы BVDV (указаны стрелкой). ЭТС с высокими уровнями РНК BVDV (105-107 геном-экв/мл). Культивирование клеток в таких условиях приводило к контаминации клеток вирусом и последующей персистентной инфекции, что можно было обнаружить уже на 3-5-м пассаже (см. рис.1, б, дорожки 1, 2, 3. Дорожка 1 - 3-и сутки культивирования и т.д.). Отмечено, что «скорость» контаминации клеток (выявляемой использованными нами методами) зависела от исходного уровня вируса в использованной сыворотке. Кроме того, видовое происхождение клеток и штам-мовые особенности BVDV, исходно присутствовавших в ЭТС и контаминировавших затем клетки, также могли повлиять на эффективность проникновения вируса в клетки [17, 29, 30]. Наоборот, при культивировании контаминирован-ных клеток Vero в среде с ЭТС, не содержащей BVDV, РНК вируса можно было обнаружить в среде культивирования на 3-5-е сутки после очередного пересева (см. рис. 1б, дорожки 4, 5, 6). Это можно рассматривать как дополнительное подтверждение полного цикла репродукции BVDV в клетках с его выходом из клетки. Таким образом, было доказано, что источником быстрого заражения клеток является использование сывороток КРС (эмбриональная сыворотка крови, сыворотка новорожденных телят и взрослого поколения), которые были получены от инфицированных животных-доноров. Микоплазмы в культуре клеток. К настоящему времени основным способом выявления микоплазм в клеточных культурах является метод ПРЦ [11, 15, 21, 22, 25]. Всего нами было исследовано 69 образцов клеточных культур (клеточные отвивки маточных линий, разных лет), из них в высоком проценте случаев (>20) был выявлен один из видов микоплазм (отмечены значками * в тесте на общую микоплазму и M. hominis, значком** в тесте на общую микоплазму иM. laidlawii, значком *** в тесте на общую микоплазму и M. argi-nini). Так, в клетках HeLa (21/04/10)* (карцинома шейки матки) микоплазма была выявлена в одном случае (1/1); в клетках эпителия почки Frhk*** микоплазма была выявлена в двух из четырех протестированных закладок (2/4); в клетках глиобластомы крысы ЭПНТ* - 1/1; в клетках глиобла-стомы человека GL* - 1/1; в клетках ге-патомы человека CH5 (28/10/10)* - 1/3; в клетках гепатомы человека LUNNET* Разнонаправленные изменения экспрессии генов цитокинов в процессе культивирования Vero- и контаминированных Vero+ Клетки в ИФН-а ИФН-X ИЛ-1Р ИЛ-2 ИЛ-8 ИЛ 17 ФНОа течение 72 ч 1 2 3 Vero- н/и 4 Т Т Т н/и н/и 4 Т Vero+ Т4 Т 4 4 4 Т 4 н/и н/и Примечание: \ - активация транскрипции цитокинов; J, угнетение транскрипции цитокинов, н/и - уровень транскрипции цитокинов не изменяется по отношению к конститутивному уровню. (10/11/08) - 1/3; в клетках нервной ткани хорька Mpf (03/11/06)* - 2/2. В результате наших исследований показано, что ОТ-ПЦР на общую микоплазму и определение трех специфических видов (M. hominis, M. laidlawii, M. arginini) достаточно с позиций оценки качества клеток и необходимости их исключения для производственных и научных целей. Кроме того, использование метода ОТ-ПЦР, основанного на выявлении бактериальной 16S РНК в течение 1-2 сут, оказывается преимущественным по затратам времени (по сравнению с цитохимическим методом окрашивания клеток, 3-4 нед) для массового скрининга клеточных линий, а также превосходит последний по чувствительности более чем в 10 раз [22]. Присутствие микоплазм в перевиваемых клеточных культурах обычно изменяет клеточные реакции на воздействие внешних стимулов, что может привести к ошибочным результатам в эксперименте и неверным выводам. Взаимодействие между вирусными и прокариотическими патогенами пока изучено недостаточно. Модель такого взаимодействия была предложена в работах [19, 28]. Показано также, что разные типы клеточных культур по-разному пермиссивны для разных типов микоплазм [28]. Полученные нами данные свидетельствуют, что основная часть контаминированных микоплазмой клеточных линий избирательно сохраняла определенную специфичность к разным видам. Влияет ли персистирующая BVDV-инфекция на показатели функциональной активности клеточного генома? Ранее было показано, что BVDV-инфекция в хронически инфицированных BVDV клетках протекает без наблюдаемых с помощью методов световой микроскопии морфологических изменений. В нашем предыдущем сообщении указывалось, что представители разных семейств вирусов с разной эффективностью репродуцировались в контаминированнных клетках: в случае вирусов гриппа А урожай в клетках MDCK (BVDV+) был ниже, чем в «чистой» культуре (наблюдение И. Т. Федякиной, 2011). В клетках Vero при равных условиях заражения вирусом Синдбис урожай вируса по срокам инфекции был практически одинаков, в пределах ошибки титрования, а заражение в одинаковых условиях двух типов клеток вирусом Синдбис сопровождалось развитием цитопатиче-ского эффекта (наблюдение К. С. Ионовой, 2011). В связи с этим представлялось интересным выяснить, влияет ли персистирующая BVDV-инфекция клеток на показатели функциональной активности клеточного генома. Для этого мы сравнили особенности экспрессии генов цитокинов в линиях клеток Vero, нормальных и контаминированных вирусом BVDV (в обоих случаях не содержавших микоплазму), в условиях стационарного культивирования клеток Vero не-контаминированных (Vero «чистых»-Vero- и конта-минированных BVDV Vero+) в течение 3 сут. В нашей работе мы приводим только разнонаправленные реакции клеточных генов в двух типах клеток в ответ на индукцию (см. таблицу). В клетках, контаминированных BVDV (Vero+), в отличие от нормальных (Vero-) в течение 72 ч культивирования изменялась экспрессия гена ИФН-а, а также активировалась транскрипция ИФН-Х1, ИЛ-2 и угнеталась транскрипция ИФН-Х2, ИФН-Х3, ИЛ-1Р и ИЛ-8. Особого обсуждения заслуживает изменение экспрессии гена ИФН-а на уровне транскрипции в Vero+-клетках, хотя по данным определения титров внеклеточного ИФН-а в культуральной жидкости различия не были выявлены. Что это: реальные различия в продукции ИФН-а на уровне транскрипции гена и трансляции иРНК или эффект разной чувствительности методов определения продуктов транскрипции гена и трансляции иРНК? Этот факт представляет особый интерес, так как известно, что один из белков репродуцирующегося BVDV ингибирует выработку ИФН-а в зараженных клетках. Представленные данные коррелируют с результатами исследований S. R. Lee и соавт. [17], выявившими изменения уровней экспрессии генов toll-like-рецепторов, интерферо-нов 1 типа, провоспалительных и Th1/Th2 цитоки-нов в моноцитах периферической крови коров в зависимости от времени после инфекции и фенотипа (cp-BVDV 1 и non-cp-BVDV) вируса. Рассматривая механизмы персистентной BVDV-инфекции, авторы высказали гипотезу об ускользании BVDV от иммунных реакций организма путем изменения экспрессии генов TLR 3 и TLR 7 (семейство генов TLR) и их сигнальных путей. Полученные нами данные будут более подробно представлены в специальной публикации. Изложенные результаты подчеркивают необходимость постоянного контроля ЭТС и клеток на присутствие BVDV и контаминации микоплазмами [26], репродуцирующимися в клетках без морфологических проявлений инфекции. Особое внимание нужно обращать на стерильность ЭТС, являющихся основным источником контаминации клеток. Такой контроль должен быть установлен и для проверки «живых» вакцинных препаратов, в которые вирус может попадать из контаминированных клеток и фетальной сыворотки телят [20, 24].

References

Supplementary files