Мультиплексный иммуноанализ для выявления иммуноглобулинов G к вирусам простого герпеса 1-го и 2-го типов и цитомегаловирусу на основе технологии ФОСФАН
- Авторы: Никитина А.В.1, Помелова В.Г.1, Осин Н.С.2, Марданлы С.Г.3
-
Учреждения:
- ФГУП «Государственный научно-исследовательский институт биологического приборостроения» Федеральное медикобиологическое агентство России
- Закрытое акционерное общество «Иммуноскрин»
- Закрытое акционерное общество «ЭКОлаб»
- Выпуск: Том 62, № 2 (2017)
- Страницы: 87-90
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 20.01.2020
- Дата публикации: 20.04.2017
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/147
- DOI: https://doi.org/10.18821/0507-4088-2017-62-2-87-90
- ID: 147
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Разработан иммуночип для определения иммуноглобулинов G к вирусам простого герпеса 1-го и 2-го типов (ВПГ-1, ВПГ-2) и цитомегаловирусу (ЦМВ) на основе технологии ФОСФАН™. В состав иммуночипа включены рекомбинантные вирусспецифические антигены gG1 (ВПГ-1), gG2 (ВПГ-2), лизатный антиген для определения общих IgG к ВПГ обоих типов (ВПГ-1/2) и мозаичный антиген ЦМВ, содержащий иммунодоминантные последовательности белков pp150, gB, pp28 и pp52. Чувствительность и специфичность одновременного выявления IgG на иммуночипе с рекомбинантными антигенами были сопоставимы с показателями коммерческих иммуноферментных тест-систем, в том числе при анализе сывороток контрольных панелей. Лизатный антиген при сопоставимой чувствительности продемонстрировал существенно более низкую специфичность, что не позволяет рекомендовать его использование в качестве компонента мультиплексного теста. Полученные результаты могут быть положены в основу создания коммерческих мультиплексных тестов для высокопроизводительного скрининга этих и других инфекций TORCH-комплекса в клинической лаборатории.
Об авторах
А. В. Никитина
ФГУП «Государственный научно-исследовательский институт биологического приборостроения» Федеральное медикобиологическое агентство России
Автор, ответственный за переписку.
Email: an-na-nikitina@ya.ru
Россия
В. Г. Помелова
ФГУП «Государственный научно-исследовательский институт биологического приборостроения» Федеральное медикобиологическое агентство России
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Н. С. Осин
Закрытое акционерное общество «Иммуноскрин»
Email: noemail@neicon.ru
Россия
С. Г. Марданлы
Закрытое акционерное общество «ЭКОлаб»
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Список литературы
- Brown Z.A. HSV-2 specific serology should be offered routinely to antenatal patients. Rev. Med. Virol. 2000; 10 (3): 141-4.
- Newton E.R. Diagnosis of perinatal TORCH infections. Clin. Obstet. Gynecol. 1999; 42 (1): 59-70.
- Benedetti J.K., Corey L., Asley R. Recurrence rates in genital herpes after symptomatic first-episode infection. Ann. Intern. Med. 1994; 121 (11): 847-54.
- Koutsky L.A., Ashley R.I., Holmes K.K., Stevens C.E., Wolner-Hanssen P., Critchlow C.W. et al. The frequency of unrecognized type 2 herpes simplex virus infection among women: implications for the control of genital herpes. Sex. Transm. Dis. 1990; 17 (2): 90-4.
- Sucato G., Wald A., Wakabayashi E., Vieira J., Corey L. Evidence of latency and reactivation of both herpes simplex virus (HSV-1) and HSV-2 in the genital region. J. Infect. Dis. 1998; 177 (4): 1069-72.
- Kit S., Trkula D, Qavi H., Dreesman G., Kennedy R.S., Adler-Storthz K. et al. Sequential genital infections by herpes simplex viruses types 1 and 2: restriction nuclease analyses of viruses from recurrent infections. Sex. Transm. Dis. 1983; 10 (2): 67-71.
- al Samarai A.M., Shareef A.A., Kinghorn G.R., Potter C.W. Sequential genital infections with herpes simplex virus types 1 and 2. Genitourin Med. 1989; 65 (1): 39-41.
- Brown Z.A., Benedetti J., Ashley R., Burchett S., Selke S., Berry S. et al. Neonatal herpes simplex virus infection in relation to asymptomatic maternal infection at the time of labor. N. Engl. J. Med. 1991; 324 (18): 1247-52.
- Brown Z.A., Selke S., Zeh J., Kopelman J., Maslow A., Ashley R.L. et al. Acquisition of herpes simplex virus during pregnancy. N. Engl. J. Med. 1997; 337 (8): 509-15.
- Whitley R.J., Roizman B. Herpes simplex virus infections. Lancet. 2001; 357 (9267): 1513-8.
- McGeoch D.J., Moss H.W., McNab D., Frame M.C. DNA sequence and genetic content of the Hindlll I region in the short unique component of the herpes simplex virus type 2 genome: identification of the gene encoding glycoprotein G, and evolutionary comparisons. J. Gen. Virol. 1987; 68 (Pt.1): 19-38.
- Tunbäck P., Bergström T., Löwhagen G.B., Hoebeke J., Liljeqvist J.A. Type-specific reactivity of anti-glycoprotein G antibodies from the herpes simplex virus infected individuals is maintained by single or dual type-specific residues. J. Gen. Virol. 2005; 86 (Pt.2): 247-51.
- Jiang L., Yu Z., Tang Z., Jiang T., Zhang C., Lu Z. Protein arrays based on biotin-streptavidin system for the simultaneous detection of TORCH infections. J. Nanosci. Nanotechnol. 2008; 8 (5): 2286-92.
- Mezzasoma L., Bacarese-Hamilton T., Di Cristina M., Rossi R., Bistoni F., Crisanti A. Antigen microarrays for serodiagnosis of infectious diseases. Clin. Chem. 2002; 48 (1): 121-30.
- Wu D., Wu Y., Wang L., Xu W., Zhong Q. Evaluation of a novel array-based toxoplasma, rubella, cytomegalovirus, and herpes simplex virus IgG enzyme linked immunosorbent assay and its comparison with Virion/Serion enzyme linked immunosorbent assays. Ann. Lab. Med. 2014; 34 (1): 38-42.
- Osin N.S., Pomelova V.G. Multi-array immunophosphorescence technology for the detection of pathogens. In: Georgiev V.S., Western K.A., McGowan J.J., eds. Frontiers in Research. National Institute of Allergy and Infectious Diseases, NIH. Totowa, NJ: Humana Press; 2008.
- Pomelova V.G., Korenberg E.I., Kuznetsova T.I., Bychenkova T.A., Bekman N.I., Osin N.S. C6 peptide-based multiplex Phosphorescence Analysis (PHOSPHAN) for serologic confirmation of Lyme Borreliosis. PLoS One. 2015; 10 (7): e0130048.
- Никитина А.В., Помелова В.Г., Соколова М.В., Осин Н.С., Марданлы С.Г. Выбор антигенов для определения иммуноглобулина G к цитомегаловирусу на основе технологии ФОСФАН™. Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 60 (10): 36-9.
- Wald A., Ashley-Morrow R. Serological testing for herpes simplex virus (HSV)-1 and HSV-2 infection. Clin. Infect. Dis. 2002; 35 (Suppl. 2): 173-82.
- LeGoff J., Péré H., Bélec L. Diagnosis of genital herpes simplex virus infection in the clinical laboratory. Virol. J. 2014; 11: 83-99.