Ингибирование репликации вируса венесуэльскогоэнцефаломиелита лошадей поликлональными антителамик ламининсвязывающему белку
- Выпуск: Том 49, № 5 (2004)
- Страницы: 32-37
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.10.2004
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/11875
- ID: 11875
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Исследование временных и количественных характеристик ингибирования репликации вируса венесуэльского
энцефаломиелита лошадей (ВЭЛ), штамм ТС-83, в клетках Vero и СПЭВ показало, что очищенные
поликлональные кроличьи антитела к рекомбинантному ламининсвязывающему белку (ЛСБ) человека
способны полностью блокировать развитие ЦПД в этих клетках при инфицировании их дозой 107 ЦПД/мл.
Выраженность ингибирования инфекционности вируса ВЭЛ на клетках Vero прямо пропорционально
зависела от концентрации специфических антител в диапазоне 0,44-3 мкг/100 мкл. При добавлении анти-тел
к клеткам Vero после их инфицирования наблюдалось постепенное снижение ингибирующего эффекта,
который практически исчезал при внесении антител через 9 ч. Ингибирование было эффективно при
температуре как 4°С, так и 37°С. Отсутствие синтеза вирусного гликопротеина Е2 в клетках Vero, инфицированных
в присутствии антител к ЛСБ, дополнительно свидетельствует о том, что инигибирование репликации
вируса ВЭЛ наступает в ранние этапы вирусной инфекции. Полученные данные показали принципиальную
важность ЛСБ для проникновения вируса ВЭЛ в клетки млекопитающих и возможность создания
новых антивирусных препаратов против альфа-вирусных инфекций на основе блокирования механизма
рецепторного проникновения вируса в клетку.
энцефаломиелита лошадей (ВЭЛ), штамм ТС-83, в клетках Vero и СПЭВ показало, что очищенные
поликлональные кроличьи антитела к рекомбинантному ламининсвязывающему белку (ЛСБ) человека
способны полностью блокировать развитие ЦПД в этих клетках при инфицировании их дозой 107 ЦПД/мл.
Выраженность ингибирования инфекционности вируса ВЭЛ на клетках Vero прямо пропорционально
зависела от концентрации специфических антител в диапазоне 0,44-3 мкг/100 мкл. При добавлении анти-тел
к клеткам Vero после их инфицирования наблюдалось постепенное снижение ингибирующего эффекта,
который практически исчезал при внесении антител через 9 ч. Ингибирование было эффективно при
температуре как 4°С, так и 37°С. Отсутствие синтеза вирусного гликопротеина Е2 в клетках Vero, инфицированных
в присутствии антител к ЛСБ, дополнительно свидетельствует о том, что инигибирование репликации
вируса ВЭЛ наступает в ранние этапы вирусной инфекции. Полученные данные показали принципиальную
важность ЛСБ для проникновения вируса ВЭЛ в клетки млекопитающих и возможность создания
новых антивирусных препаратов против альфа-вирусных инфекций на основе блокирования механизма
рецепторного проникновения вируса в клетку.
Список литературы
- Бондаренко Е. И., Протопопова Е. В., Коновалова С. Н. и др. Ламининсвязывающий белок (ЛСБ) как клеточный рецептор для вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей (ВЭЛ): 1. Исследование взаимодействия вирионов вируса ВЭЛ с рекомбинантным ЛСБ человека // Молекул. генетика. - 2003. - № 4. - С. 36-39.
- Бондаренко Е. И., Протопопова Е. В., Коновалова С. N. и др. Ламининсвязывающий белок (ЛСБ) как клеточный рецептор для вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей (ВЭЛ): 2. Ингибирование репликации вируса ВЭЛ путем блокирования ЛСБ на поверхности клеток Vera // Молекул, генетика. - 2004. - № 1. - С. 36-40.
- Варфоломеев С. Д., Гуревич К. Г. // Биокинетика. - М., 1999. - С. 335-337.
- Гайдамович С. Я., Локтев В. Б., Лаврова И. А. и др. Моноклональные антитела, перекрестно реагирующие с вирусом клещевого энцефалита и вирусом венесуэльского энцефаломиелита лошадей // Вопр. вирусол. - 1990. - Т. 35, № 3. - С. 221-225.
- Львов Д. К., Клименко С. М., Гайдамович С. Я. и др. // Арбовирусные инфекции. - М., 1998. - С. 207-208.
- Протопопова Е. В., Хусаинова А. Д., Коновалова С. Н., Локтев В. Б. Получение и изучение свойств антиидиотипических антител, несущих на своей поверхности гемагглютинирующие паратопы вируса клещевого энцефалита // Вопр. вирусол. - 1996. - Т. 41, № 2. - С. 50-53.
- Сорокин А. В., Михайлов А. М., Качко А. В. и др. Рекомбинантный ламининсвязывающий белок человека: выделение, очистка и кристаллизация // Биохимия. - 2000. - Т. 65, № 5. - С. 644-652.
- Филатов А. В., Бачурин П. С., Маркова Н. А., Сурнакова Н. Е. Панель моноклональных антител к антигенам человеческих лимфоцитов // Эксперим. онкол. - 1989. - Т. 11, № 2. - С. 29-32.
- Agapov E. V., Razumov I. A., Frolov I. V. et al. Localization of four antigenic sites involved in Venezuelan equine encephalomyelitis virus protection // Arch. Virol. - 1994. - Vol. 139. - P. 173-181.
- Chanas A., Johnson В., Simpson D. Antigenic relationships of alphaviruses by a simple micro-culture cross-neutralization method// J. Gen. Virol. - 1976. - Vol. 32. - P. 295-300.
- Elliott R. M., Hull R., McGeoch D. J. Some highlights of virus research in 1989 // J. Gen. Virol. - 1990. - Vol. 71. - P. 1413-1426.
- Fields B. N., Greene M. I. Genetic and molecular mechanisms of viral pathogenesis: implications for prevention and treatment // Nature. - 1982. - Vol. 300. - P. 19-23.
- Kan E. A., Wang С. Y., Wang L. C., Evans R. L. Noncovalently bonded subunits of 22 and 28 kd are rapidly internalized by T cells reacted with anti-Leu-4 antibody // J. Immunol. - 1983. - Vol. 131, N 2. - P. 536-539.
- Kauffman R. S., Fields B. N. Pathogenesis of viral infections // Virology/ Ed. B. N. Fields. - New York, 1985. - P. 153-163.
- Kinney R. M., Johnson B. J., Welch J. B. et al. The full-length nucleotide sequences of the virulent Trinidad donkey strain of Venezuelan equine encephalitis virus and its attenuated vaccine derivative, strain TC-83 // Virology. - 1989. - Vol. 170. - P. 19-31.
- Ludwig G. V., Kondig J. P., Smith J. F. A putative receptor for Venezuelan equine encephalitis virus from mosquito cells // J. Virol. - 1996. - Vol. 70. - P. 5592-5599.
- Marsh M., Helenius A. Virus entry into animal cells // Adv. Virus Res. - 1989. - Vol. 36. - P. 107-151
- Nikiforova N. N.. Velikodvorskaja T. V., Kachko A. V. et al. Induction of alternatively spliced spermidine/spermine N1 -acetyltransferase mRNA in the human kidney cells infected by Venezuelan equine encephalitis and tick-borne encephalitis viruses // Virology. - 2002. - Vol. 297, N 2. - P. 163-171.
- Omar A., Koblet H. Semliki Forest virus particles containing only the El envelope glycoprotein are infectious and can induce cell- cell fusion // Virology. - 1988. - Vol. 166, N 1. - P. 17-23.
- Paredes A., Alwell-Warda K., Weaver S. С. Venezuelan equine encephalomyelitis virus structure and its divergence from old world alphaviruses // J. Virol. - 2001. - Vol. 75, N 19. - P. 9532-9537.
- Pereboev A. V., Razumov I. A., Svyatchenko V. A., Loktev V. B. Glycoproteins E2 of the Venezuelan and eastern equine encephalomyelitis viruses contain multiple cross-reactive epitopes // Arch. Virol. - 1996. - Vol. 141, N 11. - P. 2191-2205
- Roehrig J. Т., Hunt A. R., Kinney R. M., Mathews J. H. In vitro mechanisms of monoclonal antibody neutralization of alphaviruses // Virology. - 1988. - Vol. 165, N 1. - P. 66-73.
- Strauss J. H., Wang K. S., Schmaljohn A. L. et al. Host-cell receptors for Sindbis virus // Arch. Virol. Suppl. - 1994. - Vol. 9. - P. 473-484.
- Wang K. S., Kuhn R. J., Strauss E. G. et al. High-affinity 1aminin receptor is a receptor for Sindbis virus in mammalian cells// J. Virol. - 1992. - Vol. 66. - P. 4994-5001