Стратегия борьбы с вирусной диареей – болезнью слизистых крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Российской Федерации
- Выпуск: Том 58, № 6 (2013)
- Страницы: 13-18
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.12.2013
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/12242
- ID: 12242
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Вирусная диарея - болезнь слизистых (ВД-БС) крупного рогатого скота (КРС) - одна из наиболее серьезных проблем для племенных и товарных животноводческих хозяйств. Характеризуется поражением органов дыхания и желудочно-кишечного тракта, абортами, бесплодием, иммунодефицитом и персистенцией возбудителя. В настоящем сообщении излагается комплекс мероприятий по оздоровлению и профилактике ВД-БС КРС, в который включены данные литературы, инструктивных документов по диагностике и борьбе с ВД-БС, принятых Международным эпизоотическим бюро, странами Евросоюза и США, а также результаты собственных исследований.
Полный текст
Различают два биотипа возбудителя: цитопатогенный и нецитопатогенный (ЦПД+ и ЦПД-) и два генотипа: 1-й и 2-й. Штаммы возбудителя, относящиеся к разным биотипам, патогенны для животных разного возраста. В регионах с преимущественным распространением вируса биотипа ЦПД- болезнь имеет наибольшее эпизоотическое значение, поскольку протекает в форме трансплацентарной инфекции и иммуносупрессии в постнаталь-ный период [12]. Вирусы, принадлежащие к разным генотипам, частично различаются между собой в реакции нейтрализации (РН). Генотип 1 включает до 13 субгенотипов. Генотип 2 объединяет высоковирулентные штаммы, вызывающие острую и сверхострую формы болезни с тромбоцитопенией, геморрагиями и высокой смертностью [6]. Вирус генотипа 1 распространен повсеместно. Штаммы генотипа 2 циркулируют в основном в США и Канаде, а в Европе, Азии и Южной Америке регистрируют лишь спорадические случаи этой инфекции [13]. Болезнь распространена повсеместно. Частота обнаружения специфических антител (АТ) к возбудителю составляет 60-85%. В стадах животных с 1-3% персистентной инфекцией она может достигать 90%. Инцидентность инфекции в I триместре стельности при ВД превышает 3%. В 29 штатах США при обследовании 1695 животных выявлено 57% серопозитивных животных [8]. ВД-БС, вероятно, также широко распространена в РФ. По данным А.Е. Верховской [2], 90,9% обследованных животных в 15 регионах РФ являются серопозитивными. А.Г. Глотов и соавт. сообщили о том, что в животноводческих хозяйствах Сибири количество персистентно инфицированного (ПИ) скота составляет 1,7%, а среди быков-производителей - 1,4 % [3]. Основные потери животноводческих хозяйств от ВД-БС обусловлены патологией воспроизводства, а именно низкой оплодотворяемостью, абортами, врожденными уродствами у телят, рождением иммунотолерантных и вследствие этого постоянно (персистентно) инфицированных телят, у которых могут наблюдаться признаки тяжелой кровавой диареи и изъязвление слизистых оболочек [11]. Ранняя эмбриональная смертность может достигать 78,6 %, а молочная продуктивность коров - уменьшаться на 10%. Снижение иммунитета при ВД-БС способствует возникновению массовых диареи и пневмонии. Различать животных, ПИ (постоянно) и транзитно. У коров клиническое проявление инфекции отличается значительным разнообразием. Наиболее выраженное патогенное действие вируса отмечают при заражении коров в период стельности. При этом они редко проявляют какие-либо симптомы, но действие вируса на плод может быть фатальным и зависит от срока стельности в момент заражения и типа инфицирующего вируса. Инфицирование эмбриона коровы вирусами биотипов ЦПД+ или ЦПД- на 1-45-е сутки беременности вызывает его гибель и аутолиз [19]. В период стельности сроком 40-125 дней вирус ЦПД-вызывает виремию плода и формирование иммунотолерантности. Вирус не распознается как чужеродный агент и проникает практически во все органы и ткани плода, включая лимфоидные, где интенсивно размножается. Иммунная система новорожденных телят не обнаруживает возбудителя, поэтому специфические иммунные реакции в виде образования АТ не выражены. Это состояние определяется как иммунотолерантность. При этом у телят регистрируют виремию, сопровождающуюся лейкопенией. Новорожденные телята, зараженные в этот внутриутробный период, ПИ и после появления на свет выделяют во внешнюю среду большое количество вируса в течение жизни [14]. 100—125-е сутки - начало формирования иммунокомпетентности плода. Оба биотипа могут вызывать у телят врожденные дефекты (мозга или глаз), но не персистентную инфекцию. Однако инфекция в этот период также может привести к абортам. После 125-го дня и до конца беременности рождаются нормальные телята с выраженными иммунными реакциями. Иногда имеют место аборты и появление слаборожденных телят. Телята ПИ - главный источник продолжительного сохранения инфекции в стаде. Большинство ПИ-телят отстают в росте, плохо наращивают мышечную массу, что является типичным признаком персистентной инфекции. Однако некоторые из них не имеют видимых признаков болезни, достаточно хорошо развиваются и иногда вполне подходят для перевода в группу ремонтного молодняка. По достижении случного возраста и оплодотворения ПИ-первотелки также рождают ПИ-телят. Таким образом, формируются ПИ-семьи. ПИ-телята выделяют возбудителя в окружающую среду в течение жизни со всеми секретами и экскретами организма. Здоровые телята появляются в результате заражения после 125-х суток стельности. Эти телята не представляют собой проблемы. Они контактировали с вирусом ВД-БС и элиминировали его вследствие активной иммунной реакции [15]. У некоторых животных ВД-БС может протекать в острой доброкачественной форме в виде транзитной инфекции. Продолжительность болезни обычно 7-14 дней. У переболевших телят формируется напряженный иммунитет к вирусу. Симптомы транзитной инфекции могут включать как диарею, так и пневмонию [11]. Меры борьбы Противоэпизоотические мероприятия при ВД-БС строятся на следующих основных принципах: удалении ПИ-животных из стада; недопущении ввода в хозяйство персистентно зараженных животных; вакцинопрофи-лактике. Исходя из этого, считаем, что основным звеном в системе мер борьбы с инфекцией в настоящее время являются своевременное выявление инфицированных животных, их удаление и, следовательно, ликвидация постоянного источника возбудителя инфекции в стаде. В стадах с низкими показателями воспроизводства, высокой заболеваемостью и смертностью телят или при получении лабораторного подтверждения ВД-БС при острой респираторной патологии (транзитная инфекция) соответствующая программа диагностических исследований позволяет выявить ПИ-животных [18, 22]. Для повышения эффективности диагностические исследования проводят перед началом случного сезона в том случае, если в хозяйстве практикуется сезонное (туровое) осеменение коров, с тем чтобы своевременно удалить ПИ-животных до появления следующей волны ПИ-телят, т.е. в 40-125-е сутки стельности. Симптомы ВД-БС, которые могут наблюдаться в стаде, включают повышение заболеваемости и смертности телят от рождения до отъема, снижение оплодотворяемости коров, повышение количества абортов и рождение телят с врожденными уродствами [23]. Если в хозяйстве есть 1 ПИ-животное или более, то своевременное их выявление и удаление могут обеспечить успешное проведение оздоровительных мероприятий. Поскольку ПИ-коровы и ПИ-первотелки всегда рождают ПИ-телят, поголовное тестирование в стаде является эффективным путем выявления ПИ-телят и ПИ-коров. Более того, следует тестировать все поголовье, в том числе и нерепродуктивное. Лабораторные методы тестирования включают изоляцию вируса в культурах клеток с последующей идентификацией в РН или имму-ноферментным анализом (ИФА); обнаружение вирусного генома методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в крови при биопсии кожи [10]. Для широкомасштабных исследований применяют серологические методы - выявление специфических АТ (РН, ИФА) в крови и молоке. РН и ИФА используют также для постоянного контроля инфекции в стаде [22]. При этом следует отметить, что применение ИФА предпочтительно, если принимать во внимание тот факт, что клеточные линии (используемые в РН) часто контаминированы нецитопатогенными штаммами вируса ВД-БС [1, 9]. Хозяйства, в которых транзитная и персистентная формы инфекции не подтверждаются лабораторными исследованиями, являются благополучными по ВД. Вакцинопрофилактика Интенсивная работа по профилактике и оздоровлению животноводческих хозяйств от ВД-БС проводится в странах ЕС. При этом мнение о целесообразности использования вакцин неоднозначно. Учитывая положительный, так называемый скандинавский опыт оздоровительных мероприятий, Дания, Финляндия и другие страны в основу планов борьбы положили исключительно метод выявления и удаления из стада животных, зараженных ВД-БС. Это решение возникло в результате исторического опыта, показавшего, что противоэпизоо-тические мероприятия, акцентированные только на применении вакцин, недостаточно эффективны. Однако при столкновении с особенностями ведения животноводства в отдельно взятых странах и с учетом их экономических интересов был предложен альтернативный путь борьбы с инфекцией, основанный на комбинированном применении специфической профилактики и метода тестирования и удаления ПИ-животных. При этом выявление и удаление из стада ПИ-животных является обязательным условием и должно предшествовать вакцинации всего поголовья. Все маточное стадо должно быть защищено путем вакцинации, обеспечивающей предупреждение появления новых ПИ-животных [16]. Для специфической профилактики ВД применяют как живые (из ослабленных штаммов), так и инактивированные вакцины. Живые вакцины из аттенуированных штаммов ЦПД+ получили широкое применение в ряде стран. Например, во Франции успешно используют живую вакцину Mucosiffa для иммунизации скота разного возраста, в том числе стельных коров [8]. В РФ живую вакцину ВК-181 № 28 успешно применяют в неблагополучных хозяйствах более 20 лет. В последнее время в РФ используют комбинированную живую вакцину Таурус-В (вакцина ИВП) против инфекционного ринотрахеита, ВД и парагриппа-3, разработанную ЗАО НПО НАРВАК совместно с EVL-лабораторией (Нидерланды). С установлением антигенной вариабельности вируса живые и инактивированные вакцины начали готовить из двух генотипов вируса. Применение живых вакцин считается наиболее перспективным, однако опасность таких вакцин связывают с потенциальной абортогенностью многих из них. Вакцины из нескольких штаммов, в том числе вирулентных нецитопатогенных, обеспечивают более надежную иммунологическую защиту. Эффективность вакцинопро-филактики зависит не только от состава и качества вакцин, но и схемы их применения. В некоторых регионах получила распространение практика вакцинации, предусматривающая иммунизацию инактивированными и живыми препаратами [7]. Следует отметить, что в некоторых случаях, при остром течении инфекции, положительный результат удается получить парентеральным введением вирусвакцины против классической чумы свиней [5]. Профилактика инфекции в благополучных хозяйствах Профилактические мероприятия в благополучных по ВД-БС хозяйствах: специализированных товарных, племенных, фермерских хозяйствах и племпредприятиях (центры искусственного осеменения) предусматривают предупреждение ввода в хозяйство инфицированных животных; плановый контроль на ВД-БС всего поголовья путем проведения лабораторных исследований, включающих серологические тесты, вирусовыделение и индикацию возбудителя методами ПЦР, иммуногистохимии, ИФА. Хозяйства, в которых транзитная и персистентная формы инфекции не подтверждаются результатами лабораторных исследований, считаются благополучными по ВД-БС. Профилактика ВД на племпредприятиях 1. На племпредприятиях быки-доноры спермы (а также быки на подставу) должны быть безусловно свободными от ВД-БС. Указанное требование достигается при ежегодном плановом тестировании основного поголовья и тщательном контроле вновь поступающих производителей. 2. В целях предупреждения заноса инфекции на плем-предприятия новых быков-доноров спермы приобретают в хозяйствах, благополучных по ВД. Если страна или зона происхождения племенных животных неблагополучны по ВД-БС, они должны быть проверены в следующих тестах: • наличие АТ к вирусу в РН или ИФА; • выделение вируса в культуре клеток, выявление антигенов вируса в ИФА или обнаружение генома вируса в ПЦР Вновь поступившие быки подвергаются карантину в течение не менее 28 дней. За время карантина быков обследуют серологически (РН в культуре клеток или ИФА) для определения иммунного статуса каждого животного. Перед переводом в отделение отбора семени быки-доноры спермы, а также подставные быки подвергаются карантину длительностью не менее 28 дней. В этот период проводят диагностические исследования: • на вирусоносительство при помощи вирусологических методов, при получении отрицательного результата животных допускают в отделение отбора семени по завершении карантина; • в начале карантина всех животных подвергают серологическому исследованию для определения уровня специфических АТ к вирусу; • быков независимо от серологического статуса (как серонегативных, так и серопозитивных), отрицательных по результатам вирусологических исследований или при отсутствии положительной сероконверсии допускают в отделение отбора семени; • если наблюдается положительная сероконверсия, серонегативных животных оставляют в карантине не менее чем на 3 нед, а серопозитивные животные могут быть допущены в помещение для отбора семени; • при отсутствии сероконверсии быков повторно исследуют вирусологическими методами на виремию; при отрицательных результатах животных допускают в помещение для отбора семени. 3. Обследование быков-доноров спермы и подставных быков, содержащихся в отделении отбора семени: • быков-доноров спермы и подставных быков, содержащихся в отделении отбора семени, подвергают диагностическим исследованиям не реже 1 раза в год на наличие вируса в крови или сперме с отрицательным результатом; • серонегативных быков подвергают серологическим исследованиям для подтверждения отсутствия у них специфических АТ. При получении положительных результатов исследования все серии спермы, отобранные с даты последнего отрицательного исследования, должны быть либо уничтожены, либо подвергнуты исследованию на наличие вируса. Они могут быть использованы при получении отрицательного результата исследования. 4. Исследования, проводимые до первой отправки спермы от серопозитивных быков: • перед первой отправкой спермы серопозитивных быков проводят вирусологические исследование одной дозы спермы от каждого из них, как описано выше; в случае положительного результата быка выбраковывают, а все полученные серии спермы уничтожают. 5. При поступлении племенных быков из США и Канады необходимо проводить исследование на вирус ВД-БС генотипа 2. Мероприятия в хозяйствах, неблагополучных по ВД-БС Оздоровительные мероприятия в хозяйствах, неблагополучных по ВД, включают выявление и удаление ПИ-животных. Для этого используют следующие тесты: гистохимию, групповую ПЦР, ИФА с пробами кожи для выявления антигена, вирусовыделение; кроме того, предупреждают ввод в стадо новых ПИ-животных; проводят вакцинопрофилактику. Подозрение на заболевание КРС ВД может быть вынесено в том случае, если в хозяйстве, в стаде отмечают низкие показатели воспроизводства, высокую заболеваемость и смертность телят. При этом проводят сравнительный анализ оплодотворяемости коров, анализ количества стельных животных в первые 3 нед после их осеменения или случки; анализируют количественные данные неонатальной заболеваемости и смертности телят, делового выхода телят (в %); при высоком проценте абортов, мертворождений и смертности телят учитывают данные патолого-анатомического вскрытия и лабораторных исследований патологического материала (тимус, пейеровы бляшки, селезенка, кожа, кровь); если встречаются необъяснимые потери среди телят-сосунов (пневмонии, поносы и т.д.), в лабораторию направляют соответствующие пробы для идентификации транзитной и персистентной инфекции; положительные результаты, полученные в одном тесте, должны подтверждаться результатами других исследований. Для повышения достоверности получаемых результатов диагностические исследования должны проводиться накануне репродуктивного сезона, с тем чтобы своевременно удалить ПИ-животных до появления следующей волны ПИ-телят. Подобное планирование исследований позволяет минимизировать количество тестов, необходимых для получения наиболее полной информации о стаде. контроль стада на наличие животных с острой и персистентной формами инфекции Проводится для установления возможной инфекции вируса ВД-БС КРС при помощи серологических исследований при условии, что животные не вакцинированы против ВД-БС. Исследуют группу, включающую 10% или 10 животных (в зависимости от величины стада). При отрицательных результатах серологических исследований, свидетельствующих об отсутствии вирусоно-сителей в стаде, поголовье считают свободным от инфекции. Скрининг молочных стад на наличие ПИ-носителей вируса, в основном поголовья лактирующих коров, проводят путем исследования в ПЦР соматических клеток, полученных из сборных проб молока. От нелактирую-щих коров исследуют пробы сыворотки крови на наличие вируса. Самую большую пропорцию ПИ-животных в инфицированных стадах составляют телята до 6-месячного возраста, поэтому исследования по выявлению ПИ-носителей вируса начинают с этой возрастной группы, особенно если имеются телята с клиническими признаками болезни. Затем обследуют матерей этих телят. Такую схему исследований осуществляют поэтапно, что лучше, чем одновременное обследование всех животных. Матерей ПИ-телят обязательно обследуют для исключения инфекции. Интерпретации полученных результатов обследований телят может мешать наличие у них колостральных АТ. В этом случае исследуют кожные биоптаты при помощи иммуногистохимического метода или ПЦР, а также пробы сыворотки крови до выпойки молозива [20]. ПИ-телята являются наиболее вероятным источником возбудителя инфекции для стельных животных. В стадах мясного скота их выявляют и удаляют до начала случной кампании, а в стадах молочных животных разделяют по возрастным группам, что предотвращает контакт ПИ-телят со стельными животными. После выявления и удаления всех ПИ-носителей из стада исчезает постоянный источник вируса. Результатом является значительное сокращение количества абортов, желудочно-кишечных и респираторных болезней [17]. Профилактика повторного инфицирования свободного от вируса стада является важным моментом на этапе проведения заключительных мероприятий. Заражение вирусом может произойти при контакте с инфицированными животными из других стад или ПИ-носителями, рожденными после завершения оздоровительных мероприятий. Нельзя допускать контакт с животными из стад с неизвестным статусом в отношении ВД-БС. Для этого исследуют всех животных при завозе в период карантина или закупают их из свободных от ВД-БС стад. Строго запрещается вводить в оздоровленные стада животных из неблагополучных по ВД-БС хозяйств. Особенно большой риск представляют стельные коровы. Новорожденных телят перед вводом в основное стадо обязательно обследуют на наличие персистентной инфекции вируса ВД-БС КРС.×
Список литературы
- Алексеенкова С.В., Юров Г.К., Гальнбек Т.В., Калита И.А., Юров К.П. Проверка клеточных культур на контаминацию вирусом диареи крупного рогатого скота - необходимое условие производства биологических препаратов. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2013; 1: 15-8.
- Верховская А.Е., Сергеев В.А., Алипер Т.И., Иванов Е.В. Особенности диагностики и профилактики вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария. 2009; 8: 3-7.
- Глотов А.Г. Вирусная диарея - болезнь слизистых оболочек крупного рогатого скота. Ветеринария. 2008; 6: 56-60.
- Жидков С.А., Лебедев А.И., Гоголев М.М., Коромыслов Г.Ф. Роль вирусной диареи в этиологии респираторных и желудочнокишечных болезней телят. Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 1995; 3: 50-3.
- Крюков Н.Н., Зудилина З.Ф.,Юров К.П., Жидков С.А. О неспецифической профилактике вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария. 1978; 1: 37-40.
- Кунгурцева О.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Влияние антигенной вариабельности вируса вирусной диареи - болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота на результаты серологической диагностики. Ветеринарная патология. 2010; 1: 20-4.
- Сергеев В.А., Непоклонов Е.А. Вирусы и вирусные вакцины. М.: Москва; 2007.
- Сергеев О.В. Иммунобиологические и патогенетические особенности вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария. 2011; 5: 16-21.
- Урываев Л.В., Дедова А.В., Дедова Л.В., Ионова К.С., Парасюк Н.А., Селиванова Т.К. и др. О контаминации клеточных культур вирусом диареи - болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота (BVD). Бюллетень экспериментальной биологии медицины. 2012; 1: 88-93.
- Юров Г.К., Алексеенкова С.В., Диас Хименес К.А., Неустроев М.П., Юров К.П. Антигенные свойства нецитопатогенных штаммов вируса ВД-БС. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2013; 2: 24-6.
- Baker J.C. The clinical manifestations of bovine viral diarrhea infection. The Veterinary clinics of North America. Food animal practice. 1995; 11(3): 425-45.
- Bolin S.R., McClurkin A.W., Cutlip R.C., Coria M.F. Severe clinical disease induced in cattle persistently infected with noncytopathic bovine viral diarrhea virus by superinfection with cytopathic bovine viral diarrhea virus. American journal of veterinary research. 1985; 46(3): 573-6.
- Bolin S.R., Ridpath J.F. Prevalence of bovine viral diarrhea virus genotypes and antibody against those viral genotypes in fetal bovine serum. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 1998; 10(2): 135-9.
- Brodersen B.W., Kelling C.L. Effect of concurrent experimentally induced bovine respiratory syncytial virus and bovine viral diarrhea virus infection on respiratory tract and enteric diseases in calves. American journal of veterinary research. 1998; 59(11): 1423-30.
- Brownlie J. Pathogenesis of mucosal disease and molecular aspects of bovine virus diarrhoea virus. Veterinary microbiology. 1990; 23(1-4): 371-82.
- Carman S., van Dreumel T., Ridpath J., Hazlett M., Alves D., Dubovi E. et al. Severe acute bovine viral diarrhea in Ontario, 1993-1995. Journal of veterinary diagnostic investigation. 1998; 10(1): 27-35.
- Corapi W.V., Elliott R.D., French T.W., Arthur D.G., Bezek D.M., Dubovi E.J. Thrombocytopenia and hemorrhages in veal calves infected with bovine viral diarrhea virus. Journal of the American Veterinary Medical Association. 1990; 196(4): 590-6.
- Granger L.M., ed. Beef 2007-2008. Prevalence and Control of Bovine Viral Diarrhea Virus on U. S. Caw - calf Operations. USA: USDA Press; 2008.
- Lindberg A., Groenendaal H., Alenius S., Emanuelson U. Validation of a test for dams carrying foetuses persistently infected with bovine viral-diarrhoea virus based on determination of antibody levels in late pregnancy. Preventive veterinary medicine. 2001; 51(3-4): 199-214.
- McClurkin A.W., Littledike E.T., Cutlip R.C., Frank G.H., Coria M.F., Bolin S.R. Production of cattle immunotolerant to bovine viral diarrhea virus. Canadian journal of comparative medicine. 1984; 48(2): 156-61.
- Olafson P., MacCallum A.D., Fox F.H. An apparently new transmissible disease of cattle. The Cornell Veterinarian. 1946; 36: 205-13.
- Position Paper “EU Thematic Network on Control Bovine Viral Diarrhea, BVDV Control, QRLT-2001-01573”. Avaible at: http://www. afbini.gov. uk/chs-thematic-network-position-paper-on-bvd-control. pdf
- Wittum T.E., Grotelueschen D.M., Brock K.V., Kvasnicka W.G., Floyd J.G., Kelling C.L. et al. Persistent bovine viral diarrhoea virus infection in US beef herds. Preventive veterinary medicine. 2001; 49(1-2): 83-94.