Изучение тератогенности вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» (Matonaviridae: Rubivirus: Rubella virus) в опыте на обезьянах макак-резус

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Вирус краснухи обладает выраженными тератогенными свойствами, способными вызывать генерализованную внутриутробную инфекцию плода персистирующего характера. В связи с этим необходимым этапом доклинического изучения вакцинного штамма для живой аттенуированной вакцины против краснухи является контроль утраты тератогенности, присущей диким штаммам вируса.

Цель исследования: комплексное изучение тератогенных свойств вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» в опыте на обезьянах макак-резус.

Материал и методы. В эксперименте использовали серонегативных к вирусу краснухи самок вида макак-резус (Macaca rhesus, Macaca mulatta) на ранних сроках беременности в возрасте 4–7 лет (n = 13). Животных опытной группы (n = 9) однократно внутримышечно иммунизировали препаратом из штамма «Орлов-В». Обезьян группы сравнения (n = 3) иммунизировали коммерческим препаратом, содержащим вакцинный штамм Wistar RA27/3. Самке контрольной группы (n = 1) вводили растворитель вакцины против краснухи. Изучение возможных тератогенных свойств вакцинных штаммов вируса краснухи проводили с использованием комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов. Клинические наблюдения осуществлялись в течение 3 месяцев после рождения детёнышей. Определение титров антител в сыворотке крови иммунизированных макак-резусов выполняли в реакции торможения гемагглютинации (РТГА) на 28–30 сутки после заражения. Метод иммуноферментного анализа (ИФА) ис- пользовали для определения антител класса IgM в сыворотке обезьян первого месяца жизни. Выявление РНК вируса проводили методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с электрофоретической детекцией продуктов амплификации.

Результаты. Установлено отсутствие маркёров врождённой краснушной инфекции у особей, родившихся от привитых во время беременности обезьян. Показано, что метод ПЦР может являться информативным тестом, подтверждающим отсутствие тератогенных свойств вакцинных штаммов вируса краснухи.

Обсуждение. Полученные данные охарактеризовали вакцинные штаммы вируса краснухи «Орлов-В» и Wistar RA27/3 как утратившие тератогенные свойства. Обсуждается возможность использования альтернативной по отношению к классическим патоморфологическим методам стратегии доклинической оценки специфической безопасности противовирусных вакцин с применением комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов.

Заключение. Результаты, полученные в рамках настоящего исследования, показали отсутствие тератогенных свойств вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В».

Полный текст

Введение

В связи со значительной тератогенностью вируса краснухи и содержанием аттенуированного вакцин­ного штамма в составе живой вакцины беременность является противопоказанием для вакцинирования против этого заболевания [1][2]. Имеется ряд публи­каций, свидетельствующих о возможности проник­новения вакцинных штаммов вируса краснухи через плаценту [3][4].

Так, в Великобритании при обследовании 515 жен­щин, по тем или иным причинам привитых против краснухи в период беременности, у рождённых де­тей не было выявлено признаков синдрома врождён­ной краснухи (СВК), хотя в 10,6% случаев опреде­лялось внутриутробное инфицирование плода [5]. В Иране в 2003 г. при обследовании новорождённых, родившихся от вакцинированных во время беремен­ности матерей (при проведении массовой иммуни­зации против кори и краснухи), у 5 детей были об­наружены антитела класса IgM в пуповинной кро­ви, однако ни у одного ребёнка не было выявлено пороков развития, аналогичных наблюдаемым при СВК [6]. По данным Mangtani P., Evans S.J.W. et al. теоретический риск поражения плода при вак­цинации беременных против краснухи составляет от 0 до 0,6%, что значительно ниже, чем риск раз­вития СВК вследствие первичного инфицирования женщины в течение первых 12 недель гестационно- го срока [7]. В связи с этим ряд учёных пришли к за­ключению, что непреднамеренная вакцинация при наличии беременности не является показанием к её прерыванию [1][7][8][9].

Однако штаммы для живой рубеолярной вакцины, предназначенные для парентерального введения лю­дям, должны тщательно изучаться в отношении воз­можного тератогенного действия [10]. Понятно, что изучение тератогенного потенциала вновь разраба­тываемых медицинских иммунобиологических пре­паратов (МИБП) возможно лишь в эксперименте на соответствующей лабораторной модели [11].

Наиболее адекватной моделью для изучения виру­са краснухи являются лабораторные приматы. Этот возбудитель патогенен, в частности, для обезьян макак-резус (Macaca mulatta; Macaca rhesus), чув­ствительных к интраназальному, внутримышечному и внутривенному заражению. Патогенез вызываемого им заболевания сходен с таковым у человека по таким параметрам, как продолжительность инкубационного периода и вирусовыделения, наличие вирусемии, ди­намика формирования вирусспецифических антител [12]. Экспериментально доказанное развитие виру­семии при заражении макак-резус патогенным штам­мом вируса краснухи [13] свидетельствует о возмож­ности проникновения возбудителя через плаценту, что, в свою очередь, позволяет использовать эту мо­дель для контроля возможного тератогенного дей­ствия вакцинных штаммов.

Вакцинный штамм «Орлов-В» [14] был восстанов­лен в ФБУН «Санкт-Петербургский научно-исследо­вательский институт эпидемиологии и микробиоло­гии им. Пастера» («Санкт-Петербургский НИИЭМ им. Пастера») после многолетнего хранения исход­ного штамма «Орлов» при температуре -20 оС про­ведением дополнительных пассажей в тканевом суб­страте, использовавшемся для аттенуации исходного вируса, - первичной культуре клеток почки кролика (ППК). В таких условиях возможны различия со­хранности основных биологических характеристик вирусных частиц, составляющих гетерогенную по­пуляцию исходного пула культуральной вируссодер­жащей жидкости (ВСЖ). В связи с этим тщательный контроль безопасности применения, в том числе кон­троль утраты тератогенных свойств, присущих диким штаммам, рассматривается как необходимый этап доклинического изучения вакцинного штамма для живой аттенуированной вакцины против краснухи. В экспериментах подобного рода необходимым явля­ется использование препарата сравнения - вакцины однонаправленного действия, желательно коммерче­ского производства [10].

Целью исследования являлось комплексное изучение тератогенных свойств вакцинного штамма вируса крас­нухи «Орлов-В» в опыте на обезьянах макак-резус.

Материал и методы

В работе использованы вакцинные штаммы вируса краснухи «Орлов-В» (39 пассажей в культуре клеток ППК) и Wistar RA27/3 (в составе живой аттенуиро­ванной вакцины производства ФГУП «НПО «Ми­кроген», Москва, Россия). Лабораторные животные - самки макак-резус в возрасте 4-7 лет на ранних сроках (первая треть - первая половина) гестации в количестве 13 особей. Сформированы 3 груп­пы: 9 самок иммунизировали препаратом из штамма «Орлов-В», 3 самок - препаратом сравнения (вакцин­ный штамм Wistar RA27/3) и 1 особи вводили плаце­бо (растворитель вакцины против краснухи).

Обращение с животными проводилось в строгом соответствии с Правилами содержания и ухода за не­человекообразными приматами (ГОСТ 33216-2014).

Иммунизацию животных осуществляли однократ­ным внутримышечным введением серонегативным к краснухе самкам 0,5 мл препаратов из исследуемых штаммов. Прививочная доза соответствовала 1 при­вивочной дозе для человека (не менее 1000 ТЦД50).

Изучение потенциальных тератогенных свойств вак­цинных штаммов вируса краснухи проводили с исполь­зованием комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов.

Клиническое наблюдение за новорождёнными про­водили ежедневно. Результаты его регистрировали дважды: сразу после рождения и через 90 суток на­блюдения. У новорождённых особей изучали дви­гательную активность (объём и силу движений в ко­нечностях, способность сопротивляться извлечению из клетки и насильственному разгибанию и сгибанию конечностей); мышечную активность (самостоятель­ное удерживание на матери); сосательный рефлекс. Степень формирования скелета регистрировали од­нократно рентгенологически. На протяжении периода наблюдения проводили периодическое взвешивание детёнышей. Через 90 суток наблюдения оценивали двигательные функции, координацию движений (по способности животных совершать координированные движения конечностями при захватывании предме­тов). Мышечный тонус определяли при пальпирова­нии мышц конечностей в спокойном состоянии и при сгибании-разгибании. Фиксировали также наличие тремора, гиперкинезы; остроту зрения и слуха; аппе­тит, стул, динамику прибавки массы тела.

Определение титров антител в сыворотке крови иммунизированных беременных обезьян проводили в РТГА через 28-30 суток после иммунизации, ис­пользуя «Диагностикум краснушный антигенный су­хой для РТГА» производства ОНТ ФБУН «Санкт-Пе­тербургский НИИЭМ им. Пастера» (Санкт-Петербург, Россия) в соответствии с инструкцией по примене­нию препарата.

Иммуноглобулины класса IgM определяли в сыво­ротке крови детёнышей первого месяца жизни, ро­дившихся от иммунизированных во время беремен­ности самок. Для определения IgM-антител применя­ли ИФА-тест-систему «Вектор-Рубелла-IgM-стрип» (Новосибирск, Россия) в соответствии с инструкцией по применению. Все образцы сыворотки были за­шифрованы и исследовались одновременно.

У 2 новорождённых, погибших в родах, произво­дили аутопсию, патоморфологическое изучение вну­тренних органов. Исследование тканей и органов обезьян проведено в лаборатории патоморфологии ФГБНУ «НИИ медицинской приматологии». Гисто­логическому исследованию (с окраской гематоксили­ном и эозином и по методу Ниссля) были подвергнуты головной мозг, лёгкое, печень, почка, поджелудочная железа, селезёнка новорождённых, а также плацента самок.

Для установления возможного наличия РНК вируса краснухи в образцах тканей погибших в родах осо­бей, плаценте и пуповинной крови использовали ме­тод ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации. Экстракцию РНК из исследуемого материала производили при помощи набора реаген­тов «РИБО-сорб» (ООО «ИнтерЛабСервис», Москва, Россия), для проведения реакции обратной транс­крипции - «РЕВЕРТА-L» (ООО «ИнтерЛабСервис», Москва, Россия); амплификацию комплементарной ДНК (кДНК) выполняли с использованием набора реагентов «АмплиСенс Rubella virus-EРh» (ФГУН «Центральный НИИ эпидемиологии» Роспотребнад­зора, Москва, Россия). Все этапы реакции проводили по стандартной схеме в соответствии с инструкцией по применению. Процедуру амплификации осущест­вляли на программируемом термостате ТП4-ПЦР-01- «Терцик» (ООО «НПО ДНК-Технология», Протвино, Россия).

Результаты

Беременность 11 из 13 самок разрешилась нормаль­ными срочными родами; в 2 случаях (1 - самка, имму­низированная препаратом из штамма «Орлов-В», 1 - препаратом из штамма Wistar RA27/3) беременность завершилась мертворождением вследствие родовой травмы.

На протяжении 90 суток после рождения детё­ныши ежедневно осматривались врачом-ветерина- ром для оценки наличия или отсутствия отставания в развитии, клинических симптомов поражения центральной нервной системы, дыхательной систе­мы, органов слуха и зрения. Ни у одной из особей, родившихся живыми и получавших грудное вскарм­ливание, внешних пороков и аномалий развития выявлено не было. Детёныши развивались активно; их поведение, масса тела, слух, зрение и структу­ра костного аппарата соответствовали возрастной норме. При рентгенологическом исследовании ске­лета у 2 из них (по 1 из групп «Орлов-В», инвен­тарный №40066, и плацебо, инвентарный №39978) были выявлены рахитоподобные изменения, однако они не являлись вирусспецифическими и связаны с особенностями питания животных.

Для определения возможной связи смерти 2 детё­нышей с вакцинацией их матерей во время беремен­ности было проведено патоморфологическое и ви­русологическое исследование их органов и тканей, а также плаценты самок. Ни в одном случае вирус- специфических поражений у погибших новорождён­ных выявлено не было. Гистологическая картина головного мозга и периферических органов соот­ветствовала норме. Таким образом, в обоих случаях смерть наступила по причинам, не связанным с ма­теринской иммунизацией против краснухи во время беременности.

При проведении вирусологического исследования с целью сравнения использовали аутопсийный ма­териал детёныша, не включённого в настоящий экс­перимент и погибшего от алиментарной дистрофии из-за отсутствия грудного вскармливания (агалактия у матери) (инвентарный №32771).

Ни в одном из исследованных образцов РНК вируса краснухи обнаружена не была (рисунок), что свиде­тельствует об отсутствии проникновения вакцинных штаммов вируса через плаценту и, соответственно, отсутствии внутриутробного инфицирования плода в каждом из исследованных случаев гибели новорож­дённого.

Изучение сывороток крови самок, однократно им­мунизированных против краснухи во время беремен­ности, показало 100%-ную сероконверсию, т.е. все подопытные животные ответили на введение вакцин­ных препаратов образованием специфических анти­тел в высоких титрах. В то же время по окончании периода наблюдения в сыворотке обезьяны группы плацебо специфические антитела не определялись (таблица).

E. Miller и соавт. показали, что частота выявления антител класса IgM в сыворотках крови детей с вну­триутробной инфекцией рубеолярной этиологии мак­симальна в первый месяц жизни, когда она составля­ет 100% [15]. На основании этих данных исследова­ние сывороток детёнышей на наличие IgM-фракции противокраснушных антител проводили, собирая об­разцы крови в течение первых 30 суток после рожде­ния. В качестве положительного и отрицательного контроля (помимо контролей, заложенных в тест-си­стеме) были исследованы сыворотки крови 2 людей: одна, полученная от больного с лабораторно под­тверждённой краснухой, другая - от больного с от­рицательным результатом на IgM-антитела к вирусу краснухи. Ни в одном случае в сыворотке крови детё­нышей, родившихся от иммунизированных во время беременности матерей, не было выявлено противо- краснушных IgM.

 

Детекция РНК вируса краснухи (Rubella virus) в клиническом материале методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в 2% агарозном геле.

Примечание. М - маркёр длин фрагментов пар нуклеотидов; 1-27 - образцы клинического материала; К- - отрицательный контроль ПЦР ампли­фикации кДНК; К+ - положительный контроль ПЦР амплификации кДНК; ОК - отрицательный контроль экстракции РНК; ПК - положительный контроль экстракции РНК, пн - пары нуклеотидов.

Detection of rubella virus RNA in clinical material by PCR with electrophoretic detection of amplicons in 2% agarose gel.

Note. M - DNA size marker; 1-27 - clinical samples; K- - negative PCR control of cDNA amplification; K+ - positive PCR control of cDNA amplification; OK - negative RNA extraction control; ПК - positive RNA extraction control, пн - nucleotide pairs.

 

Обсуждение

Учитывая способность вируса краснухи проникать через плаценту и вызывать множественные систем­ные поражения плода, контроль утраты тератогенных свойств у вакцинных штаммов для живой краснушной вакцины представляется необходимым и важным эта­пом доклинического изучения таких препаратов. Мо­делью для проведения настоящего исследования стал вакцинный штамм вируса краснухи «Орлов-В», полу­ченный путём аттенуации дикого вируса серийными пассажами в культуре клеток почки кролика. В каче­стве препарата сравнения использован штамм Wistar RA27/3, входящий в состав всех используемых в на­стоящее время коммерческих вакцин против краснухи.

В ходе эксперимента получены данные по клини­ческому наблюдению за детёнышами, родившими­ся от вакцинированных во время беременности ма­как-резусов. Все 11 особей были оценены врачом-ве- теринаром как клинически здоровые; первый месяц ежедневного клинического наблюдения не выявил ни в одном случае задержки в развитии условных рефлексов. Периодическое взвешивание не обнару­жило отставания в физическом развитии. В дальней­шем в течение 3 месяцев наблюдения каких-либо па­тологических состояний ни у одного из подопытных животных выявлено не было.

Учитывая, что одним из частых проявлений СВК является повышенная проницаемость тканей костно­го аппарата [16], было проведено рентгенологическое обследование новорождённых для установления воз­можных несоответствий развития скелета физиологи­ческой возрастной норме. Ни в одном случае не было выявлено характерных для СВК костных поражений. Обнаруженные у 2 особей (1 иммунизированнной штаммом «Орлов-В» и 1 - растворителем вакцины против краснухи) рахитоподобные изменения в росто­вых зонах наиболее быстро растущих костей оценены врачом-рентгенологом как неспецифические.

 

Титры антител в РТГА в сыворотке крови иммунизированных и не иммунизированной против краснухи обезьян

Antibody titers in HI test in serum of monkeys immunized and not immunized against rubella

№ обезьяны

Monkey No.

Штамм, использованный для иммунизации

Strain used for immunization

Титры антител в РТГА

Antibody titers in HI test

34086

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 320

33605

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 160

37085

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 640

37174

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 :1280

37686

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 320

32771

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 160

37721

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 640

33276

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 :1280

37988

«Орлов-В»

«Orlov-V»

1 : 640

31939

Wistar RA27/3 Wistar RA27/3

1 : 640

37301

Wistar RA27/3 Wistar RA27/3

1 : 320

33992

Wistar RA27/3 Wistar RA27/3

1 : 640

36518

Плацебо

Placebo

<1 : 10

Вирусологическое исследование тканей плаценты (методом ПЦР) для определения возможного наличия РНК вируса краснухи удалось провести в 3 случаях. Ни в одном из исследованных образцов плаценты (2 группы «Орлов-В» и 1 - группы Wistar RA27/3), а также пуповинной крови (1 образец группы «Орлов-В»), не было выявлено вирусной РНК.

Тщательное и всестороннее патоморфологическое исследование тканей и органов детёнышей, погиб­ших во время родов (1 - группа «Орлов-В»; 1 - Wistar RA27/3), также не выявило вирусспецифических по­ражений органов и тканей.

В конечной стадии эксперимента сыворотки крови самок были исследованы в РТГА на наличие противо- краснушных антител; детёнышей - на наличие IgM- фракции антител.

Результаты РТГА свидетельствуют о развитии вы­раженного иммунного ответа на вакцинацию препа­ратами из штаммов «Орлов-В» и Wistar RA27/3 и под­тверждают факт иммунизации животных.

Известно, что в отличие от противовирусных IgG- антител, передающихся от матери к плоду и обеспе­чивающих пассивный противовирусный иммунитет на протяжении первых месяцев жизни, иммуноглобу­лины класса IgM не проходят через плаценту [17]. Их присутствие в крови новорождённых свидетельству­ет о развитии внутриутробной инфекции. Это обстоя­тельство было убедительно доказано E. Miller и соавт. в когортных исследованиях детей, рождённых с вну­триутробными инфекциями (ВУИ) рубеолярной этио­логии [15]. В связи с этим согласно классификации ВОЗ диагноз «врождённая краснуха» устанавлива­ется только на основании обнаружения в крови мла­денца IgM-антител к вирусу краснухи даже без на­личия клинической симптоматики заболевания [18]. Следовательно, обнаружение иммуноглобулинов этого класса в крови особей, родившихся от иммуни­зированных против краснухи матерей, было бы без­условным свидетельством сохранения тератогенных свойств вакцинного вируса. И напротив, отсутствие таковых - убедительное доказательство того, что штаммы, использованные в настоящем исследова­нии, не вызывают внутриутробного инфицирования плода. Важно, что такие результаты получены без умерщвления детёнышей, что полностью отвечает принципам гуманного обращения с лабораторными животными.

Следует особо отметить, что использование ПЦР для детекции РНК вируса краснухи в аутопсийном материале, плаценте и пуповинной крови может слу­жить объективным маркёром для оценки потенциаль­ного тератогенного действия [19] испытываемых пре­паратов на этапе их доклинического изучения.

Заключение

В ходе изучения возможного тератогенного действия вакцинных штаммов вируса краснухи в опыте на обезьянах макак-резус ни в одном слу­чае не было получено каких-либо данных, свиде­тельствующих о внутриутробном инфицировании плода иммунизированных во время беременности самок. Таким образом, результаты проведённо­го исследования показали отсутствие тератоген­ных свойств в условиях данного эксперимента как у вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В», так и у штамма Wistar RA27/3, использованного в качестве препарата сравнения и входящего в со­став коммерческих вакцин против краснухи. Пока­зана информативность ПЦР как теста, подтвержда­ющего специфическую безопасность вакцинных штаммов для живых вирусных вакцин на этапе их доклинического изучения.

×

Об авторах

И. Н. Лаврентьева

ФБУН «СанктПетербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера» Роспотребнадзора

Email: pasteur.lawr@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2188-6547

д.м.н., зав. лаборатории экспериментальной вирусологии 

197101, Санкт-Петербург

Россия

О. А. Шамсутдинова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки

Автор, ответственный за переписку.
Email: shamsutdinova-o-a@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2742-3965

научный сотрудник лаборатории иммунологии и биологии клетки

354376, Сочи

Россия

И. И. Чугуева

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки

Email: Chuguevairina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1567-1929

ветеринарный врач

354376, Сочи

Россия

Д. Д. Карал-оглы

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки

Email: karal_5@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3606-1668

к.б.н., ведущий научный сотрудник лаб. иммунологии и биологии клетки

354376, Сочи

Россия

О. И. Вышемирский

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки

Email: olegvyshem@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5345-8926

к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной вирусологии

354376, Сочи

Россия

Список литературы

  1. Castillo-Solórzano C., Reef S.E., Morice A., Vascones N., Chevez A.E., Castalia-Soares R., et al. Rubella vaccination of unknowingly pregnant women during mass campaigns for rubella and congenital rubella syndrome elimination, the Americas 2001–2008. J. Infect. Dis. 2011; 204 (Suppl. 2): S713–7. https://doi.org/10.1093/infdis/jir489.
  2. Шамсутдинова О.А. Живые аттенуированные вакцины для иммунопрофилактики. Инфекция и иммунитет. 2017; 7(2): 107–16. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2017-2-107-116.
  3. Hofmann J., Kortung M., Pustowoit B., Faber R., Piskazeck U., Liebert U.G. Persistent fetal rubella vaccine virus infection following inadvertent vaccination during early pregnancy. J. Med. Virol. 2000; 61(1): 155–8. https://doi.org/10.1002/(sici)1096-9071(200005)61:1%3C155::aid-jmv25%3E3.0.co;2-o.
  4. Da Silva e Sá G.R., Camacho L.A., Stavola M.S., Lemos X.R., Basílio de Oliveira C.A., Siqueira M.M. Pregnancy outcomes following rubella vaccination: A prospective study in the State of Rio de Janeiro, Brazil, 2001–2002. J. Infect. Dis. 2011; 204(2):S722–8. https://doi.org/10.1093/infdis/jir408.
  5. Keller-Stanislawski B., Englun J.A., Kang G., Mangtani P., Neuzil K., Nohynek H., et al. Safety of immunization during pregnancy: A review of the evidence of selected inactivated and live attenuated vaccines. Vaccine. 2014; 32(52): 7057–64. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.09.052.
  6. Hamkar R., Jalilvand S., Abdolbaghi M.H., Esteghamati A.R., Hagh-Goo A., Jelyani K.N., et al. Inadvertent rubella vaccination of pregnant women: Evaluation of possible transplacental infection with rubella vaccine. Vaccine. 2006; 24(17): 3558–63. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.02.001.
  7. Mangtani P., Evans S.J.W., Lange B., Oberle D., Smith J., Drechsel- Baeuerle U., et al. Safety profile of rubella vaccine administered to pregnant women: A systematic review of pregnancy related adverse events following immunisation, including congenital rubella syndrome and congenital rubella infection in the foetus or infant. Vaccine. 2020; 38(5): 963–78. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.11.070.
  8. Regan A.K. The safety of maternal immunization. Hum. Vacc. Immunother. 2016; 12(12): 3132–6. https://doi.org/10.1080/21645515.2016.1222341.
  9. Nasiri R., Yoseffi J., Khajedaloe M., Sarafraz Yazdi M., Delgoshaei F. Congenital rubella syndrome after rubella vaccination in 1–4 weeks periconceptional period. Indian J. Pediatr. 2009; 76(3): 279–82. https://doi.org/10.1007/s12098-009-0053-x.
  10. Миронов А.Н., Бунатян Н.Д. Руководство по проведению до- клинических исследований лекарственных средств. Том 1. М.: Гриф и К; 2012.
  11. СП 3.3.2.561-96. Государственные испытания и регистрация новых иммунобиологических препаратов. М.: 1998.
  12. Knipe D.M., Howley P.M., eds. Fields Virology. Philadelphia: Williams & Wilkins; 2013.
  13. Лаврентьева И.Н. Молекулярно-биологические свойства аттенуированных штаммов вируса краснухи. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008; 85(4): 55–9.
  14. Лаврентьева И.Н., Сухобаевская Л.П., Жебрун А.Б. Штамм вируса краснухи для получения медицинских иммунобиологических препаратов (МИБП). Патент РФ №2081912; 1995.
  15. Miller E., Cradock-Watson J.E., Pollock T.M. Consequences of confirmed maternal rubella at successive stage of pregnancy. Lancet. 1982; 2(8302): 781–4. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(82)92677-0.
  16. Yazigi A., Eldin De Pecoulas A., Vauloup-Fellous C., Grangeot- Keros L., Ayoubi J.M., Picone O. Fetal and neonatal abnormalities due to congenital rubella syndrome: a review of literature. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2017; 30(3): 274–8. https://doi.org/10.3109/14767058.2016.1169526.
  17. Best J.M. Rubella. Semin. Fetal Neonat. Med. 2007; 12(3): 182–92. https://doi.org/10.1016/j.siny.2007.01.017.
  18. Sampedro Martínez A., Martínez L.A., Teatino P.M., Rodríguez- Granger J. Diagnosis of congenital infection. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 2011; 29 (Suppl. 5): 15–20. https://doi.org/10.1016/s0213-005x(11)70039-8 (in Spanish).
  19. Macе M., Cointe D., Six C., Levy-Bruhl D., Parent du Chatelet I., Ingrand D., et al. Assessment of the diagnostic value of RT-PCR on amniotic fluid for prenatal diagnosis of congenital rubella infection. Pathol. Biol. (Paris). 2004; 52(9): 540–3. https://doi.org/10.1016/j.patbio.2004.06.004 (in French).

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Лаврентьева И.Н., Шамсутдинова О.А., Чугуева И.И., Карал-оглы Д.Д., Вышемирский О.И., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-77676 от 29.01.2020.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах