Изучение тератогенности вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» (Matonaviridae: Rubivirus: Rubella virus) в опыте на обезьянах макак-резус
- Авторы: Лаврентьева И.Н.1, Шамсутдинова О.А.2, Чугуева И.И.2, Карал-оглы Д.Д.2, Вышемирский О.И.2
-
Учреждения:
- ФБУН «СанктПетербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера» Роспотребнадзора
- ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки
- Выпуск: Том 65, № 6 (2020)
- Страницы: 357-363
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 07.01.2021
- Дата принятия к публикации: 07.01.2021
- Дата публикации: 07.01.2021
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/460
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-6-6
- ID: 460
Цитировать
Аннотация
Введение. Вирус краснухи обладает выраженными тератогенными свойствами, способными вызывать генерализованную внутриутробную инфекцию плода персистирующего характера. В связи с этим необходимым этапом доклинического изучения вакцинного штамма для живой аттенуированной вакцины против краснухи является контроль утраты тератогенности, присущей диким штаммам вируса.
Цель исследования: комплексное изучение тератогенных свойств вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» в опыте на обезьянах макак-резус.
Материал и методы. В эксперименте использовали серонегативных к вирусу краснухи самок вида макак-резус (Macaca rhesus, Macaca mulatta) на ранних сроках беременности в возрасте 4–7 лет (n = 13). Животных опытной группы (n = 9) однократно внутримышечно иммунизировали препаратом из штамма «Орлов-В». Обезьян группы сравнения (n = 3) иммунизировали коммерческим препаратом, содержащим вакцинный штамм Wistar RA27/3. Самке контрольной группы (n = 1) вводили растворитель вакцины против краснухи. Изучение возможных тератогенных свойств вакцинных штаммов вируса краснухи проводили с использованием комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов. Клинические наблюдения осуществлялись в течение 3 месяцев после рождения детёнышей. Определение титров антител в сыворотке крови иммунизированных макак-резусов выполняли в реакции торможения гемагглютинации (РТГА) на 28–30 сутки после заражения. Метод иммуноферментного анализа (ИФА) ис- пользовали для определения антител класса IgM в сыворотке обезьян первого месяца жизни. Выявление РНК вируса проводили методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с электрофоретической детекцией продуктов амплификации.
Результаты. Установлено отсутствие маркёров врождённой краснушной инфекции у особей, родившихся от привитых во время беременности обезьян. Показано, что метод ПЦР может являться информативным тестом, подтверждающим отсутствие тератогенных свойств вакцинных штаммов вируса краснухи.
Обсуждение. Полученные данные охарактеризовали вакцинные штаммы вируса краснухи «Орлов-В» и Wistar RA27/3 как утратившие тератогенные свойства. Обсуждается возможность использования альтернативной по отношению к классическим патоморфологическим методам стратегии доклинической оценки специфической безопасности противовирусных вакцин с применением комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов.
Заключение. Результаты, полученные в рамках настоящего исследования, показали отсутствие тератогенных свойств вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В».
Полный текст
Введение
В связи со значительной тератогенностью вируса краснухи и содержанием аттенуированного вакцинного штамма в составе живой вакцины беременность является противопоказанием для вакцинирования против этого заболевания [1][2]. Имеется ряд публикаций, свидетельствующих о возможности проникновения вакцинных штаммов вируса краснухи через плаценту [3][4].
Так, в Великобритании при обследовании 515 женщин, по тем или иным причинам привитых против краснухи в период беременности, у рождённых детей не было выявлено признаков синдрома врождённой краснухи (СВК), хотя в 10,6% случаев определялось внутриутробное инфицирование плода [5]. В Иране в 2003 г. при обследовании новорождённых, родившихся от вакцинированных во время беременности матерей (при проведении массовой иммунизации против кори и краснухи), у 5 детей были обнаружены антитела класса IgM в пуповинной крови, однако ни у одного ребёнка не было выявлено пороков развития, аналогичных наблюдаемым при СВК [6]. По данным Mangtani P., Evans S.J.W. et al. теоретический риск поражения плода при вакцинации беременных против краснухи составляет от 0 до 0,6%, что значительно ниже, чем риск развития СВК вследствие первичного инфицирования женщины в течение первых 12 недель гестационно- го срока [7]. В связи с этим ряд учёных пришли к заключению, что непреднамеренная вакцинация при наличии беременности не является показанием к её прерыванию [1][7][8][9].
Однако штаммы для живой рубеолярной вакцины, предназначенные для парентерального введения людям, должны тщательно изучаться в отношении возможного тератогенного действия [10]. Понятно, что изучение тератогенного потенциала вновь разрабатываемых медицинских иммунобиологических препаратов (МИБП) возможно лишь в эксперименте на соответствующей лабораторной модели [11].
Наиболее адекватной моделью для изучения вируса краснухи являются лабораторные приматы. Этот возбудитель патогенен, в частности, для обезьян макак-резус (Macaca mulatta; Macaca rhesus), чувствительных к интраназальному, внутримышечному и внутривенному заражению. Патогенез вызываемого им заболевания сходен с таковым у человека по таким параметрам, как продолжительность инкубационного периода и вирусовыделения, наличие вирусемии, динамика формирования вирусспецифических антител [12]. Экспериментально доказанное развитие вирусемии при заражении макак-резус патогенным штаммом вируса краснухи [13] свидетельствует о возможности проникновения возбудителя через плаценту, что, в свою очередь, позволяет использовать эту модель для контроля возможного тератогенного действия вакцинных штаммов.
Вакцинный штамм «Орлов-В» [14] был восстановлен в ФБУН «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера» («Санкт-Петербургский НИИЭМ им. Пастера») после многолетнего хранения исходного штамма «Орлов» при температуре -20 оС проведением дополнительных пассажей в тканевом субстрате, использовавшемся для аттенуации исходного вируса, - первичной культуре клеток почки кролика (ППК). В таких условиях возможны различия сохранности основных биологических характеристик вирусных частиц, составляющих гетерогенную популяцию исходного пула культуральной вируссодержащей жидкости (ВСЖ). В связи с этим тщательный контроль безопасности применения, в том числе контроль утраты тератогенных свойств, присущих диким штаммам, рассматривается как необходимый этап доклинического изучения вакцинного штамма для живой аттенуированной вакцины против краснухи. В экспериментах подобного рода необходимым является использование препарата сравнения - вакцины однонаправленного действия, желательно коммерческого производства [10].
Целью исследования являлось комплексное изучение тератогенных свойств вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» в опыте на обезьянах макак-резус.
Материал и методы
В работе использованы вакцинные штаммы вируса краснухи «Орлов-В» (39 пассажей в культуре клеток ППК) и Wistar RA27/3 (в составе живой аттенуированной вакцины производства ФГУП «НПО «Микроген», Москва, Россия). Лабораторные животные - самки макак-резус в возрасте 4-7 лет на ранних сроках (первая треть - первая половина) гестации в количестве 13 особей. Сформированы 3 группы: 9 самок иммунизировали препаратом из штамма «Орлов-В», 3 самок - препаратом сравнения (вакцинный штамм Wistar RA27/3) и 1 особи вводили плацебо (растворитель вакцины против краснухи).
Обращение с животными проводилось в строгом соответствии с Правилами содержания и ухода за нечеловекообразными приматами (ГОСТ 33216-2014).
Иммунизацию животных осуществляли однократным внутримышечным введением серонегативным к краснухе самкам 0,5 мл препаратов из исследуемых штаммов. Прививочная доза соответствовала 1 прививочной дозе для человека (не менее 1000 ТЦД50).
Изучение потенциальных тератогенных свойств вакцинных штаммов вируса краснухи проводили с использованием комплекса клинических, иммунологических, патоморфологических и вирусологических методов.
Клиническое наблюдение за новорождёнными проводили ежедневно. Результаты его регистрировали дважды: сразу после рождения и через 90 суток наблюдения. У новорождённых особей изучали двигательную активность (объём и силу движений в конечностях, способность сопротивляться извлечению из клетки и насильственному разгибанию и сгибанию конечностей); мышечную активность (самостоятельное удерживание на матери); сосательный рефлекс. Степень формирования скелета регистрировали однократно рентгенологически. На протяжении периода наблюдения проводили периодическое взвешивание детёнышей. Через 90 суток наблюдения оценивали двигательные функции, координацию движений (по способности животных совершать координированные движения конечностями при захватывании предметов). Мышечный тонус определяли при пальпировании мышц конечностей в спокойном состоянии и при сгибании-разгибании. Фиксировали также наличие тремора, гиперкинезы; остроту зрения и слуха; аппетит, стул, динамику прибавки массы тела.
Определение титров антител в сыворотке крови иммунизированных беременных обезьян проводили в РТГА через 28-30 суток после иммунизации, используя «Диагностикум краснушный антигенный сухой для РТГА» производства ОНТ ФБУН «Санкт-Петербургский НИИЭМ им. Пастера» (Санкт-Петербург, Россия) в соответствии с инструкцией по применению препарата.
Иммуноглобулины класса IgM определяли в сыворотке крови детёнышей первого месяца жизни, родившихся от иммунизированных во время беременности самок. Для определения IgM-антител применяли ИФА-тест-систему «Вектор-Рубелла-IgM-стрип» (Новосибирск, Россия) в соответствии с инструкцией по применению. Все образцы сыворотки были зашифрованы и исследовались одновременно.
У 2 новорождённых, погибших в родах, производили аутопсию, патоморфологическое изучение внутренних органов. Исследование тканей и органов обезьян проведено в лаборатории патоморфологии ФГБНУ «НИИ медицинской приматологии». Гистологическому исследованию (с окраской гематоксилином и эозином и по методу Ниссля) были подвергнуты головной мозг, лёгкое, печень, почка, поджелудочная железа, селезёнка новорождённых, а также плацента самок.
Для установления возможного наличия РНК вируса краснухи в образцах тканей погибших в родах особей, плаценте и пуповинной крови использовали метод ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации. Экстракцию РНК из исследуемого материала производили при помощи набора реагентов «РИБО-сорб» (ООО «ИнтерЛабСервис», Москва, Россия), для проведения реакции обратной транскрипции - «РЕВЕРТА-L» (ООО «ИнтерЛабСервис», Москва, Россия); амплификацию комплементарной ДНК (кДНК) выполняли с использованием набора реагентов «АмплиСенс Rubella virus-EРh» (ФГУН «Центральный НИИ эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия). Все этапы реакции проводили по стандартной схеме в соответствии с инструкцией по применению. Процедуру амплификации осуществляли на программируемом термостате ТП4-ПЦР-01- «Терцик» (ООО «НПО ДНК-Технология», Протвино, Россия).
Результаты
Беременность 11 из 13 самок разрешилась нормальными срочными родами; в 2 случаях (1 - самка, иммунизированная препаратом из штамма «Орлов-В», 1 - препаратом из штамма Wistar RA27/3) беременность завершилась мертворождением вследствие родовой травмы.
На протяжении 90 суток после рождения детёныши ежедневно осматривались врачом-ветерина- ром для оценки наличия или отсутствия отставания в развитии, клинических симптомов поражения центральной нервной системы, дыхательной системы, органов слуха и зрения. Ни у одной из особей, родившихся живыми и получавших грудное вскармливание, внешних пороков и аномалий развития выявлено не было. Детёныши развивались активно; их поведение, масса тела, слух, зрение и структура костного аппарата соответствовали возрастной норме. При рентгенологическом исследовании скелета у 2 из них (по 1 из групп «Орлов-В», инвентарный №40066, и плацебо, инвентарный №39978) были выявлены рахитоподобные изменения, однако они не являлись вирусспецифическими и связаны с особенностями питания животных.
Для определения возможной связи смерти 2 детёнышей с вакцинацией их матерей во время беременности было проведено патоморфологическое и вирусологическое исследование их органов и тканей, а также плаценты самок. Ни в одном случае вирус- специфических поражений у погибших новорождённых выявлено не было. Гистологическая картина головного мозга и периферических органов соответствовала норме. Таким образом, в обоих случаях смерть наступила по причинам, не связанным с материнской иммунизацией против краснухи во время беременности.
При проведении вирусологического исследования с целью сравнения использовали аутопсийный материал детёныша, не включённого в настоящий эксперимент и погибшего от алиментарной дистрофии из-за отсутствия грудного вскармливания (агалактия у матери) (инвентарный №32771).
Ни в одном из исследованных образцов РНК вируса краснухи обнаружена не была (рисунок), что свидетельствует об отсутствии проникновения вакцинных штаммов вируса через плаценту и, соответственно, отсутствии внутриутробного инфицирования плода в каждом из исследованных случаев гибели новорождённого.
Изучение сывороток крови самок, однократно иммунизированных против краснухи во время беременности, показало 100%-ную сероконверсию, т.е. все подопытные животные ответили на введение вакцинных препаратов образованием специфических антител в высоких титрах. В то же время по окончании периода наблюдения в сыворотке обезьяны группы плацебо специфические антитела не определялись (таблица).
E. Miller и соавт. показали, что частота выявления антител класса IgM в сыворотках крови детей с внутриутробной инфекцией рубеолярной этиологии максимальна в первый месяц жизни, когда она составляет 100% [15]. На основании этих данных исследование сывороток детёнышей на наличие IgM-фракции противокраснушных антител проводили, собирая образцы крови в течение первых 30 суток после рождения. В качестве положительного и отрицательного контроля (помимо контролей, заложенных в тест-системе) были исследованы сыворотки крови 2 людей: одна, полученная от больного с лабораторно подтверждённой краснухой, другая - от больного с отрицательным результатом на IgM-антитела к вирусу краснухи. Ни в одном случае в сыворотке крови детёнышей, родившихся от иммунизированных во время беременности матерей, не было выявлено противо- краснушных IgM.
Детекция РНК вируса краснухи (Rubella virus) в клиническом материале методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в 2% агарозном геле.
Примечание. М - маркёр длин фрагментов пар нуклеотидов; 1-27 - образцы клинического материала; К- - отрицательный контроль ПЦР амплификации кДНК; К+ - положительный контроль ПЦР амплификации кДНК; ОК - отрицательный контроль экстракции РНК; ПК - положительный контроль экстракции РНК, пн - пары нуклеотидов.
Detection of rubella virus RNA in clinical material by PCR with electrophoretic detection of amplicons in 2% agarose gel.
Note. M - DNA size marker; 1-27 - clinical samples; K- - negative PCR control of cDNA amplification; K+ - positive PCR control of cDNA amplification; OK - negative RNA extraction control; ПК - positive RNA extraction control, пн - nucleotide pairs.
Обсуждение
Учитывая способность вируса краснухи проникать через плаценту и вызывать множественные системные поражения плода, контроль утраты тератогенных свойств у вакцинных штаммов для живой краснушной вакцины представляется необходимым и важным этапом доклинического изучения таких препаратов. Моделью для проведения настоящего исследования стал вакцинный штамм вируса краснухи «Орлов-В», полученный путём аттенуации дикого вируса серийными пассажами в культуре клеток почки кролика. В качестве препарата сравнения использован штамм Wistar RA27/3, входящий в состав всех используемых в настоящее время коммерческих вакцин против краснухи.
В ходе эксперимента получены данные по клиническому наблюдению за детёнышами, родившимися от вакцинированных во время беременности макак-резусов. Все 11 особей были оценены врачом-ве- теринаром как клинически здоровые; первый месяц ежедневного клинического наблюдения не выявил ни в одном случае задержки в развитии условных рефлексов. Периодическое взвешивание не обнаружило отставания в физическом развитии. В дальнейшем в течение 3 месяцев наблюдения каких-либо патологических состояний ни у одного из подопытных животных выявлено не было.
Учитывая, что одним из частых проявлений СВК является повышенная проницаемость тканей костного аппарата [16], было проведено рентгенологическое обследование новорождённых для установления возможных несоответствий развития скелета физиологической возрастной норме. Ни в одном случае не было выявлено характерных для СВК костных поражений. Обнаруженные у 2 особей (1 иммунизированнной штаммом «Орлов-В» и 1 - растворителем вакцины против краснухи) рахитоподобные изменения в ростовых зонах наиболее быстро растущих костей оценены врачом-рентгенологом как неспецифические.
Титры антител в РТГА в сыворотке крови иммунизированных и не иммунизированной против краснухи обезьян
Antibody titers in HI test in serum of monkeys immunized and not immunized against rubella
№ обезьяны Monkey No. | Штамм, использованный для иммунизации Strain used for immunization | Титры антител в РТГА Antibody titers in HI test |
---|---|---|
34086 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 320 |
33605 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 160 |
37085 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 640 |
37174 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 :1280 |
37686 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 320 |
32771 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 160 |
37721 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 640 |
33276 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 :1280 |
37988 | «Орлов-В» «Orlov-V» | 1 : 640 |
31939 | Wistar RA27/3 Wistar RA27/3 | 1 : 640 |
37301 | Wistar RA27/3 Wistar RA27/3 | 1 : 320 |
33992 | Wistar RA27/3 Wistar RA27/3 | 1 : 640 |
36518 | Плацебо Placebo | <1 : 10 |
Вирусологическое исследование тканей плаценты (методом ПЦР) для определения возможного наличия РНК вируса краснухи удалось провести в 3 случаях. Ни в одном из исследованных образцов плаценты (2 группы «Орлов-В» и 1 - группы Wistar RA27/3), а также пуповинной крови (1 образец группы «Орлов-В»), не было выявлено вирусной РНК.
Тщательное и всестороннее патоморфологическое исследование тканей и органов детёнышей, погибших во время родов (1 - группа «Орлов-В»; 1 - Wistar RA27/3), также не выявило вирусспецифических поражений органов и тканей.
В конечной стадии эксперимента сыворотки крови самок были исследованы в РТГА на наличие противо- краснушных антител; детёнышей - на наличие IgM- фракции антител.
Результаты РТГА свидетельствуют о развитии выраженного иммунного ответа на вакцинацию препаратами из штаммов «Орлов-В» и Wistar RA27/3 и подтверждают факт иммунизации животных.
Известно, что в отличие от противовирусных IgG- антител, передающихся от матери к плоду и обеспечивающих пассивный противовирусный иммунитет на протяжении первых месяцев жизни, иммуноглобулины класса IgM не проходят через плаценту [17]. Их присутствие в крови новорождённых свидетельствует о развитии внутриутробной инфекции. Это обстоятельство было убедительно доказано E. Miller и соавт. в когортных исследованиях детей, рождённых с внутриутробными инфекциями (ВУИ) рубеолярной этиологии [15]. В связи с этим согласно классификации ВОЗ диагноз «врождённая краснуха» устанавливается только на основании обнаружения в крови младенца IgM-антител к вирусу краснухи даже без наличия клинической симптоматики заболевания [18]. Следовательно, обнаружение иммуноглобулинов этого класса в крови особей, родившихся от иммунизированных против краснухи матерей, было бы безусловным свидетельством сохранения тератогенных свойств вакцинного вируса. И напротив, отсутствие таковых - убедительное доказательство того, что штаммы, использованные в настоящем исследовании, не вызывают внутриутробного инфицирования плода. Важно, что такие результаты получены без умерщвления детёнышей, что полностью отвечает принципам гуманного обращения с лабораторными животными.
Следует особо отметить, что использование ПЦР для детекции РНК вируса краснухи в аутопсийном материале, плаценте и пуповинной крови может служить объективным маркёром для оценки потенциального тератогенного действия [19] испытываемых препаратов на этапе их доклинического изучения.
Заключение
В ходе изучения возможного тератогенного действия вакцинных штаммов вируса краснухи в опыте на обезьянах макак-резус ни в одном случае не было получено каких-либо данных, свидетельствующих о внутриутробном инфицировании плода иммунизированных во время беременности самок. Таким образом, результаты проведённого исследования показали отсутствие тератогенных свойств в условиях данного эксперимента как у вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В», так и у штамма Wistar RA27/3, использованного в качестве препарата сравнения и входящего в состав коммерческих вакцин против краснухи. Показана информативность ПЦР как теста, подтверждающего специфическую безопасность вакцинных штаммов для живых вирусных вакцин на этапе их доклинического изучения.
Об авторах
И. Н. Лаврентьева
ФБУН «СанктПетербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера» Роспотребнадзора
Email: pasteur.lawr@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2188-6547
д.м.н., зав. лаборатории экспериментальной вирусологии
197101, Санкт-Петербург
РоссияО. А. Шамсутдинова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки
Автор, ответственный за переписку.
Email: shamsutdinova-o-a@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2742-3965
научный сотрудник лаборатории иммунологии и биологии клетки
354376, Сочи
РоссияИ. И. Чугуева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки
Email: Chuguevairina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1567-1929
ветеринарный врач
354376, Сочи
РоссияД. Д. Карал-оглы
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки
Email: karal_5@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3606-1668
к.б.н., ведущий научный сотрудник лаб. иммунологии и биологии клетки
354376, Сочи
РоссияО. И. Вышемирский
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Минобрнауки
Email: olegvyshem@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5345-8926
к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной вирусологии
354376, Сочи
РоссияСписок литературы
- Castillo-Solórzano C., Reef S.E., Morice A., Vascones N., Chevez A.E., Castalia-Soares R., et al. Rubella vaccination of unknowingly pregnant women during mass campaigns for rubella and congenital rubella syndrome elimination, the Americas 2001–2008. J. Infect. Dis. 2011; 204 (Suppl. 2): S713–7. https://doi.org/10.1093/infdis/jir489.
- Шамсутдинова О.А. Живые аттенуированные вакцины для иммунопрофилактики. Инфекция и иммунитет. 2017; 7(2): 107–16. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2017-2-107-116.
- Hofmann J., Kortung M., Pustowoit B., Faber R., Piskazeck U., Liebert U.G. Persistent fetal rubella vaccine virus infection following inadvertent vaccination during early pregnancy. J. Med. Virol. 2000; 61(1): 155–8. https://doi.org/10.1002/(sici)1096-9071(200005)61:1%3C155::aid-jmv25%3E3.0.co;2-o.
- Da Silva e Sá G.R., Camacho L.A., Stavola M.S., Lemos X.R., Basílio de Oliveira C.A., Siqueira M.M. Pregnancy outcomes following rubella vaccination: A prospective study in the State of Rio de Janeiro, Brazil, 2001–2002. J. Infect. Dis. 2011; 204(2):S722–8. https://doi.org/10.1093/infdis/jir408.
- Keller-Stanislawski B., Englun J.A., Kang G., Mangtani P., Neuzil K., Nohynek H., et al. Safety of immunization during pregnancy: A review of the evidence of selected inactivated and live attenuated vaccines. Vaccine. 2014; 32(52): 7057–64. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.09.052.
- Hamkar R., Jalilvand S., Abdolbaghi M.H., Esteghamati A.R., Hagh-Goo A., Jelyani K.N., et al. Inadvertent rubella vaccination of pregnant women: Evaluation of possible transplacental infection with rubella vaccine. Vaccine. 2006; 24(17): 3558–63. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.02.001.
- Mangtani P., Evans S.J.W., Lange B., Oberle D., Smith J., Drechsel- Baeuerle U., et al. Safety profile of rubella vaccine administered to pregnant women: A systematic review of pregnancy related adverse events following immunisation, including congenital rubella syndrome and congenital rubella infection in the foetus or infant. Vaccine. 2020; 38(5): 963–78. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.11.070.
- Regan A.K. The safety of maternal immunization. Hum. Vacc. Immunother. 2016; 12(12): 3132–6. https://doi.org/10.1080/21645515.2016.1222341.
- Nasiri R., Yoseffi J., Khajedaloe M., Sarafraz Yazdi M., Delgoshaei F. Congenital rubella syndrome after rubella vaccination in 1–4 weeks periconceptional period. Indian J. Pediatr. 2009; 76(3): 279–82. https://doi.org/10.1007/s12098-009-0053-x.
- Миронов А.Н., Бунатян Н.Д. Руководство по проведению до- клинических исследований лекарственных средств. Том 1. М.: Гриф и К; 2012.
- СП 3.3.2.561-96. Государственные испытания и регистрация новых иммунобиологических препаратов. М.: 1998.
- Knipe D.M., Howley P.M., eds. Fields Virology. Philadelphia: Williams & Wilkins; 2013.
- Лаврентьева И.Н. Молекулярно-биологические свойства аттенуированных штаммов вируса краснухи. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008; 85(4): 55–9.
- Лаврентьева И.Н., Сухобаевская Л.П., Жебрун А.Б. Штамм вируса краснухи для получения медицинских иммунобиологических препаратов (МИБП). Патент РФ №2081912; 1995.
- Miller E., Cradock-Watson J.E., Pollock T.M. Consequences of confirmed maternal rubella at successive stage of pregnancy. Lancet. 1982; 2(8302): 781–4. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(82)92677-0.
- Yazigi A., Eldin De Pecoulas A., Vauloup-Fellous C., Grangeot- Keros L., Ayoubi J.M., Picone O. Fetal and neonatal abnormalities due to congenital rubella syndrome: a review of literature. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2017; 30(3): 274–8. https://doi.org/10.3109/14767058.2016.1169526.
- Best J.M. Rubella. Semin. Fetal Neonat. Med. 2007; 12(3): 182–92. https://doi.org/10.1016/j.siny.2007.01.017.
- Sampedro Martínez A., Martínez L.A., Teatino P.M., Rodríguez- Granger J. Diagnosis of congenital infection. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 2011; 29 (Suppl. 5): 15–20. https://doi.org/10.1016/s0213-005x(11)70039-8 (in Spanish).
- Macе M., Cointe D., Six C., Levy-Bruhl D., Parent du Chatelet I., Ingrand D., et al. Assessment of the diagnostic value of RT-PCR on amniotic fluid for prenatal diagnosis of congenital rubella infection. Pathol. Biol. (Paris). 2004; 52(9): 540–3. https://doi.org/10.1016/j.patbio.2004.06.004 (in French).