Peculiarities of the influenza and ARVI viruses circulation during epidemic season 2019–2020 in some regions of Russia

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Introduction. The surveillance of influenza viruses in ARVI structure and study of their properties in epidemic season 2019–2020 in Russian Federation are actual for investigations due to tasks of Global Influenza Strategy initiated by WHO in 2019.

Material and methods. The data of epidemiological surveillance on influenza- and ARVI-associated morbidity and hospitalization in different age groups of population were analyzed; virological, genetic and statistical methods were used.

Results. Preschool children were involved in epidemic the most. Meanwhile, the highest rate of hospitalization was observed in patients of 18–40 years old. Influenza A(H1N1)pdm09 virus dominated in etiology of ARVI in hospitalized patients and pneumonia. The role of respiratory viruses in severe cases of pneumonia and bronchoalveolar syndrome in children was shown. The differences in spectrum of circulating viruses caused ARVI in different regions of Russia were found. Influenza A(H1N1)pdm09 and B/Victoria-like viruses were the main etiological agents that caused of epidemic; its activity among all ARVI was 7.3 and 8.0%, respectively. The differences in antigenic properties of influenza A(H3N2) and B epidemic strains compared to vaccine viruses were found. The populations of epidemic strains were presented by following dominant genetic groups: 6B1.A5/183P for A(H1N1)pdm09, 3С.2а1b+137F for A(H3N2) and V1A.3 line B/Victoria-like for B viruses. The good profile of epidemic strains susceptibility to anti-neuraminidase inhibitors has been saved. The most of the studied influenza strains had the receptor specificity characteristic of human influenza viruses.

Conclusions. Obtained results identified the peculiarities of viruses caused the influenza and ARVI in epidemic season 2019–2020 in different regions of Russia. These results suggested the important role of influenza A(H1N1) pdm09 in severe cases and pneumonia in adults 18–40 years old. The continuing drift in influenza viruses was found, which, apparently, could not but affect the efficacy of vaccine prophylaxis and was also considered in the recommendations of WHO experts on the composition of influenza vaccines for the countries of the Northern Hemisphere in the 2020–2021 season.

Full Text

Введение

Массив возбудителей острых респираторных ви­русных инфекций (ОРВИ), ежегодно вызывающих эпидемии в мире в осенне-зимний период, включает РНК-содержащие вирусы семейства Orthomyxoviridae родов Influenza virus (Influenza A virus - A(H1N1)pdm09, A(H3N2) и Influenza virus B (Influenza B virus)), семей­ства Coronaviridae (Coronavirinae) рода Alphacoronavi- rus: Duvinacovirus (HCoV), семейства Paramyxoviridae (Paramyxovirinae) рода Rubulavirus (HPIV-2, -4), рода Respirovirus (HPIV-1, -3 - вирусы парагриппа человека), рода Pneumovirus (HRSV - респираторно-синцитиаль­ный вирус человека), рода Metapneumovirus (HMPV - метапневмовирус человека), семейства Picornaviridae рода Enterovirus (HEV-D - энтеровирус D человека, прежде HRV - риновирус человека, >152 серотипов) и ДНК-содержащие вирусы семейства Parvoviridae (Parvovirinae) рода Bocavirus (HBV - бокавирус челове­ка) и семейства Adenoviridae рода Mastadenovirus, куда входит 54 серотипа 7 аденовирусов человека (HAdV): HAdV-A (12, 18, 31); HAdV-B (3, 7, 11, 14, 16, 21, 34, 35, 50); HAdV-C (1, 2, 5, 6); HAdV-D (8-10, 13, 15, 17, 19, 20, 22­30, 32, 33, 36-39, 42-49, 51, 53, 54); Had-E (4); Had-F (40, 41); Had-G (52) [1][2]. Таким образом, сезонный комплекс возбудителей ОРВИ включает десятки одно­временно циркулирующих вирусов (>200 генетических групп из 6 семейств и 10 родов), с трудом различающих­ся по клинической картине, дифференциация которых возможна лишь при лабораторной диагностике, прежде всего с применением молекулярно-генетических мето­дов, в частности полимеразной цепной реакции с об­ратной транскрипцией (ОТ-ПЦР). Циркуляция на этом фоне SARS-CoV-2 определяет сложность выявления реальных этиологических факторов любой сезонной эпидемической вспышки с респираторным заражением [3][4].

В 2019 г. ВОЗ выступила с инициативой Глобальной стратегии по борьбе с гриппом в период 2019-2030 гг. (Global Influenza Strategy for 2019-2030), направ­ленной на усиление эпидемиологического надзора и подготовки к будущим пандемиям [5][6][7]. В частно­сти, важная роль отводится исследованиям по изуче­нию особенностей циркуляции вирусов гриппа и их свойств, механизмов изменчивости и восприимчи­вости (host factors), минимизации рисков инфициро­вания и развития тяжёлых форм, разработке новых эффективных диагностических систем, вакцин и ле­карственных препаратов.

Цель настоящей работы заключалась в изучении особенностей циркуляции и свойств возбудителей ОРВИ на отдельных территориях РФ в эпидемиче­ском сезоне 2019-2020 гг., что напрямую соответству­ет задачам, поставленным ВОЗ перед странами.

Материал и методы

Сбор данных по заболеваемости и лабораторной диагностике гриппа и ОРВИ. В рамках осуществле­ния эпидемиологического надзора за циркуляцией вирусов гриппа в РФ Центр экологии и эпидемио­логии гриппа (ЦЭЭГ) Института вирусологии им. Д.И. Ивановского ФГБУ «НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России в сотрудничестве с 10 опорными базами, представленными Территориальными управ­лениями и ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора в Европейской части, на Урале, в Сибири и на Дальнем Востоке, провели анализ по­казателей заболеваемости, госпитализации и случаев с летальными исходами, этиологически связанных с вирусами гриппа и ОРВИ, в различных возрастных группах населения, а также результатов лабораторной диагностики. Период наблюдения составил с 40-й не­дели (октябрь) 2019 г. по 26-ю неделю (июнь) 2020 г.

Отбор пациентов и взятие материала. В исследо­вание вошли амбулаторные и госпитализированные в учреждения г. Москвы и опорных баз пациенты с симптомами ОРВИ. При обращении проводили за­бор назальных смывов не позднее 3-4-го дня от нача­ла болезни. В случае летального исхода в ЦЭЭГ по­ступал секционный материал (ткани бронхов, трахеи, лёгких) [8][9].

Изоляцию вирусов гриппа проводили по общепри­нятым методикам из клинических материалов в ку­риных эмбрионах (КЭ), на клетках культуры тканей MDCK (грипп A(H1N1)pdm09 и В) и MDCK-SIAT1 (грипп A(H3N2)), любезно предоставленной для на­учных целей автором линии M. Matrosovich [8][9].

Типирование изолятов проводили в реакции тор­можения гемагглютинирующей активности (РТГА) по общепринятой методике с диагностическими сыворотками к эталонным и эпидемическим виру­сам гриппа: A(H1N1)pdm09 - А/Мичиган/45/2014 и А/Брисбен/02/2018 (вакцинный); A(H3N2) -A/Гонконг/5738/14, А/Сингапур/INFIMH-16-0019/2016 и A/Канзас/14/17 (вакцинный); В - В/Колорадо/06/17 (вакцинный) и В/Вашингтон/02/19 (линия В/Виктория-подобных), В/Пхукет/3073/13 (линия В/Ямагата-подобных) [8].

Рецепторную специфичность изучали методом твердофазного сиалозидферментного анализа (СФА), основанного на определении взаимодействия рецеп­тор-связывающего сайта (РСС) НА1-вируса с 8 ана­логами клеточных рецепторов, углеводная часть ко­торых содержит неразветвлённые и разветвлённые сиалогликополимеры (СГП) [7][8]. Поскольку гем- агглютинин (HA) возбудителей гриппа, адаптиро­ванных к рецепторам человека, взаимодействует с а2-6-связанной сиаловой кислотой, а HA вирусов, адаптированных к рецепторам птиц, - с а2-3-связан- ной сиаловой кислотой [10], для оценки рецепторной специфичности (РС) использован параметр W3/6, ко­торый характеризует превышение а2-3-рецепторной специфичности (а2-3-РС) над а2-6-РС и рассчитыва­ется по формуле:

W3 = [d(3'SL)+d(3'SLN)]/[d(6'SL)+d(6'SLN)], где d - сигнал оптической плотности в СФА, соот­ветствующий данному СГП, за вычетом фонового значения.

При определении W3/6 использованы 4 наиболее информативные неразветвлённые СГП. Реактивность к ним отражает базовые особенности специфичности вируса по отношению к СГП: при W3/6 <1 преоблада­ет а2-6-РС, при W3/6 >1 доминирует а2-3-РС. Наряду с оценкой РС вируса гриппа A(HlN1)pdm09 по пара­метру W3/6 сродство возбудителя к каждому из 8 СГП выражали в процентах (Р) от суммарного сигнала оп­тической плотности, соответствующего всем 8 СГП:

P = (di/∑di) · 100, где P - вклад каждого СГП в рецепторную специфич­ность вируса, di - сигнал оптической плотности для соответствующего СГП, Σdi - суммарный сигнал оп­тической плотности, соответствующий 8 СГП.

Детекцию РНК/ДНК вирусов гриппа и ОРВИ про­водили с помощью набора реагентов АмплиСенс® «Influenza viruses A/B», АмплиСенс® «Influenza virus A/H1-swine-FL», АмплиСенс® «Influenza virus A-тип- FL», АмплиСенс® ОРВИ-скрин-FL» (ФБУН «ЦНИИЭ Роспотребнадзора, Москва, Россия) согласно реко­мендациям производителя на приборах для ПЦР в ре­жиме реального времени (Rotor Gene™ 6000, Corbett Research, Австралия и ДТ-96, ООО «НПО ДНК-Технология», Москва, Россия).

Амплификация и секвенирование штаммов вирусов гриппа. Для выделения РНК использовали TRIzol™ Reagent (Invitrogen, Carlsbad, California, США), до­бавляя в качестве соосадителя гликоген из мидий (Glycogen from Mytilus edulis, AppliChem, Darmstadt, Германия). При работе с РНК из изолятов для обрат­ной транскрипции и последующей амплификации ис­пользовали протоколы Zhou B. с соавт. [11][12]. Биб­лиотеки готовили с помощью 2 подходов: KAPA Hy­perPlus kit (Roche, Basel, Швейцария) и Illumina DNA Prep (Illumina, San Diego, California, США). При ана­лизе РНК из назального смыва использовали Maxima H minus double-stranded cDNA synthesis kit (Thermo Fisher Scientific, Waltham, Massachusetts, США) для синтеза ДНК и Respiratory Virus Oligo Panel (Illumi­na, San Diego, California, США) для приготовления библиотек. Качество и размер библиотек контроли­ровали, применяя электрофорез на High Sensitivity DNA Chips 2100 Bioanalyzer System (Agilent, Santa

Clara, California, США). Сборку геномов проводили в программах CLC Genomic Workbench v.20. Для ан­нотирования использовали NCBI Influenza Virus Se­quence Annotation Tool (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/FLU/annotation/). С целью анализа поли­пептидов и выявления мутаций применяли FluSurver Tool (https://flusurver.bii.a-star.edu.sg/). Построение филогенетических деревьев в программе MEGA v6.0 на основе последовательности сегмента HA выпол­няли для подтверждения принадлежности изолята определённой генетической группе [13]. В качестве эталонов каждой группы использовали последова­тельности, рекомендованные GISAID [14].

Результаты секвенирования депонировали в базе данных GISAID (https://www.gisaid.org/): H1N1 (EPI_ ISL_407055, EPI_ISL_407080-EPI_ISL_407090, EPI_ ISL_407192, EPI_ISL_411847-EPI_ISL_411855, EPI_ ISL_419369-EPI_ISL_419381, EPI_ISL_451923-EPI_ ISL_451933, EPI_ISL_483726); H3N2   (EPI_ISL_419382-EPI_ISL_419385); B (EPI_ISL_407240-EPI_ISL 411857, EPI_ISL_411880-EPI_ISL_411882, EPI_ISL_422439-EPI_ISL_422451, EPI_ISL_483727) и GenBank: MW018139-MW018143.

Оценку чувствительности штаммов к проти­вогриппозным препаратам проводили с помощью флуоресцентного метода ингибирования нейрамини- дазы (MUNANA) и молекулярно-генетических мето­дов, описанных ранее [8].

Результаты

Рост показателей заболеваемости гриппом и ОРВИ, как и в предыдущем сезоне, был отмечен с 44-й неде­ли 2019 г. Превышение эпидемического порога реги­стрировали в период 4-й недели 2020 г., с 2 пиковыми значениями в период 6-й (94,6 на 10 тыс.) и 12-й не­дель 2020 г. (90,2); снижение показателей ниже поро­говых значений - с 13-й недели 2020 г. Дети 3-6 и 0-2 лет были наиболее вовлечёнными в эпидемический процесс: показатели заболеваемости в период 6-й не­дели составили для них 476,9 и 424,8 на 10 тыс. насе­ления соответственно. В то же время у лиц 7-14 лет и от 15 лет и старше показатели были значительно ниже (263,8 и 37,7 соответственно). Начиная с 15-й недели 2020 г. (с 6 апреля), времени введения каран­тинно-ограничительных мероприятий по причине пандемии SARS-CoV-2, по всем оцениваемым пока­зателям заболеваемость ОРВИ была крайне низкой.

За период активности вирусов гриппа в представ­ленных в исследовании регионах РФ были госпитали­зированы 2686 пациентов с подтверждённой гриппоз­ной инфекцией, в том числе 0-2 лет - 9,3%, 3-6 лет - 13,2%, 7-14 лет - 14,6% и от 15 лет и старше - 62,9%. Максимальные показатели были отмечены на 6-й неделе 2020 г. (20%).

Анализ случаев ОРВИ в инфекционном стационаре г. Москвы, проведённый в отношении 687 пациентов (450 взрослых и 237 детей), показал, что в этиологи­ческой структуре у взрослых преобладал вирус грип­па A(H1N1)pdm09 (46,9%); доля возбудителя гриппа В составила 43,1%, A(H3n2) - 10,0%. У детей практи­чески с одинаковой частотой диагностировали грипп A(H1N1)pdm09 и B (35,1 и 37,0% соответственно); доля A(H3N2) составила 3,7%, гриппа А (тип не уста­новлен) - 24,2%. По возрастной структуре на долю пациентов от 18 до 40 лет пришлось 60,8% случаев гриппа, в когорте детей практически абсолютно до­минировали дети раннего возраста (81,5%). В груп­пе взрослых в большинстве случаев грипп протекал в среднетяжёлой форме (99,0%). Пневмония диагно­стирована у 38 (18,2%) взрослых, из них 37 (97,4%) - пациенты с гриппом, этиологически обусловленным вирусом A(H1N1)pdm09. Во всех случаях исход забо­левания был благоприятным.

При тяжёлом течении ОРВИ у детей (n = 41) грипп лабораторно подтверждён в 2 случаях; этиологически оба были связаны с вирусом A(H1N1)pdm09 и развив­шейся пневмонией. Тяжесть состояния детей была обусловлена интоксикацией и дыхательной недоста­точностью. Вместе с тем пневмония и бронхообструк- тивный синдром у 38 из 41 (82,9%) ребёнка осложни­ли течение инфекций риновирусной (EV-D) (42,1%), респираторно-синцитиальной (RsV) (23,7%), метап- невмовирусной (MPV) (5,3%), бокавирусной (BoV) (13,2%), аденовирусной (AdV) (10,5%) и альфа-коро- навирусной (CoV) (5,2%) этиологии; заболевания про­текали в виде моно- и смешанной инфекции.

Динамика частоты положительных находок в отно­шении ОРВИ и гриппа у заболевших с респираторны­ми симптомами представлена на рис. 1.

 

Рис. 1. Динамика детекции вирусов гриппа и ОРВИ методом ОТ-ПЦР в России в эпидемическом сезоне 2019-2020 гг., %.

Fig. 1. Detection of influenza and ARVI viruses by RT PCR in Russia during epidemic season 2019-2020, %.

 

В период октября-декабря 2019 г. частота по­ложительных случаев обнаружения возбудителей ОРВИ методом ОТ-ПЦР составила в среднем от 17,7 до 39,4%. С января 2020 г. показатели снизились до минимального значения к марту (9,2%) и несколь­ко возросли к июню (12,5%). Случаи гриппа, детек­тируемые в октябре-ноябре 2019 г., носили споради­ческий характер в Европейской части и на Дальнем Востоке. Рост числа положительных проб на грипп коррелировал с ростом заболеваемости и достиг мак­симальных значений в феврале 2020 г. (31,8%). По­следние случаи гриппа детектировали в апреле 2020 г.

Частота выявления положительных проб на типы/ подтипы вируса гриппа в период сезона различалась: на фоне низкой активности вируса гриппа A(H3N2) резкий рост числа положительных образцов на вирус A(H1N1)pdm09 был отмечен в феврале. Вирус гриппа В был активен на протяжении всего сезона в отличие от предыдущих лет (рис. 2). Таким образом, эпидеми­ческий сезон 2019-2020 гг. характеризовался социр- куляцией вирусов гриппа A(H1N1)pdm09 и В и низ­кой активностью вируса A(H3N2).

 

Рис. 2. Динамика детекции вирусов гриппа A(H1N1)pdm09, A(H3N2), В методом ОТ-ПЦР в России в эпидемическом сезоне 2019-2020 гг., %.

Fig. 2. Detection of influenza A(H1N1)pdm09, A(H3N2), B viruses by RT PCR in Russia during epidemic season 2019-2020, %.

Диагностика, проведённая методом ОТ-ПЦР в пе­риод с октября 2019 г. по июнь 2020 г., выявила поло­жительные находки в отношении возбудителей ОРВИ негриппозной этиологии: парагриппа (PIV) в 2,3% слу­чаев, AdV - в 1,2%, RsV - в 2,7%, EV-D - в 3,8%, CoV - в 0,7%, BoV - в 1,9% и MPV - в 0,6% случаев (табл. 1).

Отмечены некоторые особенности выявления воз­будителей ОРВИ негриппозной этиологии в различ­ных регионах России. В городах Европейской ча­сти РФ более часто детектировали BoV (4,8%), PIV (4,4%) и RsV (4,3%); на Урале и в Сибири - EV-D (3,6%) и RsV (3,0%); на Дальнем Востоке - EV-D (4,9%) (табл. 1).

Активность возбудителей негриппозной этиологии в период эпидемического сезона также различалась. Для вирусов PIV наибольшая активность была отме­чена в октябре-декабре 2019 г. и апреле-июне 2020 г.; для AdV - в октябре 2019 г.; EV-D - в октябре-ноя­бре 2019 г.; CoV - в декабре 2019 г. - январе 2020 г.; BoV - в октябре-декабре 2019 г. и апреле-мае 2020 г.; MPV - в октябре 2019 г. Активность RsV прослежи­вали на протяжении всего периода наблюдения с не­большим доминированием в январе-феврале 2020 г. (табл. 1).

В целом долевое участие этих возбудителей в структуре ОРВИ негриппозной этиологии состави­ло (на 1660 положительных случаев): EV-D - 28,7%, RsV - 20,1%, PIV - 17,2%, BoV - 14,0%, MPV - 4,8%, AdV - 8,7% и CoV - 5,2% (табл. 1).

В период эпидемического сезона были проведе­ны исследования на вирусы гриппа (20 253 образ­цов); частота детекции вирусов гриппа составила: A(H1N1)pdm09 - 7,3%, A(H3N2) - 1,8%, В - 8,0% (в целом 17,2%) (табл. 1, рис. 1, 2). В структуре воз­будителей гриппа отмечено доминирование вирусов гриппа В (54,1%).

В городах Европейской части б0льшую актив­ность регистрировали в отношении вирусов гриппа A(H1N1)pdm09 и В (54 и 43% соответственно); на Урале и в Сибири - равнозначную активность виру­сов гриппа А (по 48%). В городах Дальнего Востока доминировал вирус гриппа В (54%), б0льшую долю при сравнении с другими регионами составил вирус A(H3N2) (36,5%) и низкую активность проявил вирус гриппа A(H1N1)pdm09 (9,4%) (табл. 1).

 

Таблица 1. Выявление возбудителей ОРВИ методом ОТ-ПЦР в период октября 2019 г. - июня 2020 г. на разных территориях РФ

Table 1. Identification of ARVI pathogens by RT-PCR during October 2019 - June 2020 on different regions of RF

Продолжение табл. I см. на стр. 343.

Примечание. *Число изученных образцов/число положительных образцов. **Cезонный коронавирус (Alfacoronavirus).
Note. *Number of studied samples/number of positive samples. **Seasonal coronavirus (Alfacoronavirus).

Результаты антигенной характеристики 317 штам­мов, выделенных в декабре 2019 г. - апреле 2020 г., определили родство 126 из них с вирусом гриппа В/ Колорадо/06/17 линии В/Виктория-подобных (вхо­дившего в состав вакцин) (табл. 2). Однако половина из изученных штаммов реагировала с референс-сывороткой титра до 1/8 и менее, что свидетельствует о значимом отличии (дрейф-варианты). 178 штаммов вируса гриппа A(H1N1)pdm09 были близкородствен­ны А/Брисбен/02/2018 (входившему в состав вак­цин); подавляющее большинство реагировало с ре- ференс-сывороткой титра до 1-1/2 значения гомоло­гичного (90%). 12 штаммов вируса гриппа A(H3N2) были близкородственны эталонам А/Гонконг/5758/14 и А/Сингапур/INFIMH-16-0019/016 (генетическая группа 3С.2а), причём группа штаммов была гетеро- генна по отношению к референс-сывороткам. Толь­ко 1 из выделенных штаммов вируса гриппа A(H3N2) имел антигенное родство с сывороткой штамма А/ Канзас/14/17 (генетическая группа 3С.3а), который входил в состав вакцин.

 

Таблица 2. Антигенная характеристика штаммов вирусов гриппа A(H1N1)pdm09, A(H3N2) и В, выделенных в России в эпидемическом сезоне 2019-2020 гг.

Table 2. Antigenic characteristics of influenza A(H1N1)pdm09, A(H3N2) and B viruses strains, isolated in Russia during epidemic season 2019-2020

Тип/подтип вируса гриппа

Type/subtype of influenza virus

Отношение к титру референс-штамма с гомологичной сывороткой

Ratio to homological titer to reference strains

Число штаммов

Number of variants

Все изученные

All studied

A(H1N1)pdm09

1-1/2: A/Мичиган/45/2015 1-1/2: A/Michigan/45/2015

1/4: Л/Мичиган/45/2015 1/4: A/Michigan/45/2015

170

3

 

 

<1/8: A/Мичиган/45/2015 <1/8: A/Michigan/45/2015

5

178

 

1-1/2: А/Брисбен/02/2018* 1-1/2: А/Bгisbane/02/2018*

161

 

1/4: А/Брисбен/02/2018* 1/4: А/Bгisbane/02/2018*

12

 

 

<1/8: А/Брисбен/02/2018* <1/8: А/Bгisbane/02/2018*

5

 

A(H3N2)

1-1/2: А/Гонконг/5738/2014 (MDCK) 1-1/2: А/Hong Kong/5738/2014 (MDCK)

1/4: А/Гонконг/5738/2014 (MDCK) 1/4: А/Hong Kong/5738/2014 (MDCK)

<1/8: А/Гонконг/5738/2014 (MDCK) <1/8: А/Hong Kong/5738/2014 (MDCK)

2

3

7

 

 

1-1/2: A/ Сингапур/ЮТШН-16-0019/2016 1-1/2: A/Singapore/INFIMH-16-0019/2016

2

13

 

1/4: A/Сингапур/INFIMH-16-0019/2016 1/4: A/Singapore/INFIMH-16-0019/2016

4

 

 

<1/8: Л/Сингапур/ЮТМН-16-0019/2016 <1:8: A/Singapore/INFIMH-16-0019/2016

6

 

 

1-1/2: А/Канзас/14/17* 1-1/2: А/Kansasm/n*

1

 

В/Виктория-подобные

B/Victoria-like

1-1/2: В/Колорадо/06/2017* 1-1/2: В/Colorado/06/2017*

39

 

 

1/4: В/Колорадо/06/2017* 1/4: В/Colorado/06/2017*

<1/8: В/Колорадо/06/2017* <1/8: В/Colorado/06/2017*

26

62

107

В/Ямагата-подобные

B/Yamagata-like

В/Пхукет/3073/2013

В/Phuket/3073/2013

0

 

Примечание. *Вакцинные штаммы.

Note. *Vaccine strains.

 

В отношении 12 эпидемических штаммов вируса гриппа A(H1N1)pdm09 проведено изучение их срод­ства к СГП, «имитирующим» рецепторы эпителиаль­ных клеток верхних (α2-6) [15] и нижних (α2-3 и α2-6) [16] дыхательных путей (табл. 3).

 

Таблица 3. Сродство штаммов вируса гриппа A(H1N1)pdm09, выделенных в эпидемическом сезоне 2019-2020 гг., к сиалогликополимерам

Table 3. The affinity of influenza A(H1N1)pdm09 virus strains, isolated during epidemic season 2019-2020, to sialoglycopolymers

Штаммы

Сиалогликополимеры, % от суммы сигналов Sialoglycopolymers, % from sum signals

W3/6

Strains

3'-SL

6'-SL

3'-SLN

6'-SLN

Su-3′-SLN

Su-6'-SLN

Sle а

Sle х

Выделенные на MDCK из носоглоточных смывов

Isolated on MDCK from nasal swabs

А/Москва/55/20

A/Moscow/55/20

7,48

6,28

11,12

17,70

12,87

25,49

8,45

10,62

0,78

А/Москва/66/20

A/Moscow/66/20

9,01

7,88

8,38

17,87

12,86

26,67

7,77

9,55

0,68

А/Москва/68/20

A/Moscow/68/20

9,38

8,36

9,22

14,44

14,21

22,77

10,2

11,34

0,82

А/Москва/230/19

A/Moscow/230/19

9,17

5,82

12,16

17,92

13,05

25,22

7,15

9,50

0,90

А/Москва/244/19

A/Moscow/244/19

11,53

4,81

12,95

15,22

14,25

23,62

7,64

9,98

1,22

А/Москва/247/19

A/Moscow/247/19

8,38

7,09

11,23

15,64

14,87

24,89

7,65

10,24

0,86

А/Москва/248/19

A/Moscow/248/19

8,69

9,08

9,40

18,17

12,23

25,13

7,83

9,48

0,66

А/Пенза/249/19

A/Penza/249/19

14,76

3,10

14,90

11,52

15,71

19,72

9,44

10,86

2,03

А/Пенза/250/19

A/Penza/250/19

8,22

9,06

9,32

17,04

12,07

25,04

5,87

13,39

0,67

А/Калифорния/07/09

A/California/07/09

13,29

2,77

11,30

12,52

17,83

20,96

10,22

11,05

1,61

Выделенные на куриных эмбрионах от летальных случаев

Isolated on embrionated eggs from lethal cases

А/Ярославль/134-Т/20

A/Yaroslavl/134-T/20

14,43

1,39

14,68

13,34

14,97

15,63

13,42

12,14

1,98

А/Ярославль/135-Т/20

A/Yaroslavl/135-T/20

15,26

1,46

14,87

12,36

15,52

16,74

12,26

11,54

2,18

А/Ярославль/135^/20

A/Yaroslavl/135-L/20

14,73

7,24

12,79

11,40

15,37

17,63

11,00

9,85

1,48

А/Калифорния/07/09

A/California/07/09

13,88

8,10

12,12

11,73

15,56

16,84

10,91

10,84

1,31

Результаты исследования 9 штаммов, выделенных в культуре клеток MDCK из назальных смывов от пациентов с благоприятным исходом заболевания, пока­зали, что 7 из них обладали РС, характерной для ви­русов гриппа человека (W3/6 <1), и имели наибольшее сродство к 6'SLN- и Su-6'SlN-CTR У 2 штаммов, также выделенных из назальных смывов пациентов (54 и 69 лет) с благоприятным исходом заболевания (А/Москва/244/19 и А/Пенза/249/19), преобладала а2-3-РС (W3/6 >1); они имели наибольшее сродство к 3'SL-Crn. Штаммы, выделенные из секционного материала (А/Ярославль/134-Т/2020 (трахея), А/Ярос­лавль/135-Т/2020 (трахея) и А/Ярославль/135-L/2020 (лёгкое)) на куриных эмбрионах, обладали а2-3-РС (W3/6 >1). Эти данные согласуются с ранее получен­ными результатами [17]. Штаммы имели наибольшее сродство к Su-3'-SLN- и SuN'-SLN-СГП и наимень­шее - к 6'SL-Crn. Сопоставление показателя РС у штаммов, выделенных из трахеи и лёгкого, показа­ло, что W3/6 (трахея) > W3/6 (лёгкое).

Полногеномное секвенирование было проведено для 89 эпидемических штаммов, в том числе A(H1N1) pdm09 - 51, A(H3N2) - 4 и гриппа B - 34. Большин­ство из них было выделено от пациентов Центрально­го федерального округа (Москва, Ярославль, Липецк), отдельные штаммы представляли Северо-Западный, Приволжский, Сибирский и Дальневосточный феде­ральные округа.

Согласно результатам проведённого анализа все 34 штамма вируса гриппа В принадлежали гене­тической группе V1A.3 линии В/Виктория-подобных, характеризующейся делецией 3 аминокислотных остатков (del162-164) в HA.

Выборка штаммов вируса гриппа A(H3N2) была представлена генетическими группами 3C2A1b137F (3 штамма), 3c3A (1 штамм, подобный вакцинному). Новую генетическую группу 3C2A1b137F представ­ляли штаммы Москвы и Биробиджана, а в 3c3A, из­вестную с 2013 г., вошёл штамм из Москвы.

Наиболее разнообразными были штаммы виру­са A(H1N1)pdm09, представленные 3 генетически­ми группами: 6b1.A/183P-5a (45), 6b1.A/187A (5) и 6b1.A/156K (1). Штамм 6b1.A/156K в нашей вы­борке был от пациента 92 лет из Москвы. По данным GISAID изоляты, принадлежащие этой генетической группе, были обнаружены также в Санкт-Петербурге.

Штаммы группы 6b 1.A/187A выделяли во Владивос­токе, Иванове и Москве. К этой же геномной группе относился штамм А/Ярославль/135-L/2020. По дан­ным GISAID изоляты этой группы были зарегистриро­ваны в Китайской Народной Республике (КНР) (про­винция Гуандун) в июне 2019 г., а в эпидемическом сезоне 2019-2020 гг. - в Якутске и Санкт-Петербурге.

Согласно реконструкции эволюции вируса грип­па A(H1N1)pdm09 с помощью алгоритма Nextstrain (https://nextstrain.org/flu/seasonal/h1n1pdm/ha/2y) наиболее многочисленная группа 6b1.A/183P-5a на­чала циркулировать ещё в начале эпидемического сезона 2018-2019 гг.; в конце его появилась груп­па 6b1.A/187A. Геномная группа 6b1.A/156K являет­ся самой поздней по времени формирования, которое относится уже к сезону 2019-2020 гг.

Штамм A/Brisbane/02/2018 (H1N1)pdm09 (вакцин­ный в 2019-2020 гг.) относится к геномной груп­пе 6b1.A/183-P1, далеко отстоящей на филогенетиче­ском дереве от ветвей 3 основных групп этого сезона. Штамм A/Guandong Maonan/SWL1536/2019, выбран­ный в качестве вакцинного для сезона 2020-2021 гг., принадлежит к группе 6b1.A/187A, циркулировавшей также в прошедшем сезоне.

Штаммы прошедшего эпидемического сезона от­личали мутации, способствующие сдвигу в хозяй­ской специфичности. Для нумерации сайтов мутаций в НА использовали двойной номер H1/H3. Из 6 му­таций в HA, обнаруженных в рецептор-связывающем домене, 4 находятся в кармане домена. 2 мутации в HA являются общими для всех секвенированных изолятов вируса гриппа A(H1N1)pdm09 - S183P/S186P и R223Q/R226Q. Мутация R226Q - наиболее известная из усиливающих специфичность вируса к рецепторам верхних дыхательных путей человека [16]. Ещё 2 мутации в HA - D187A/D190A и Q189E/ Q192E - обнаружены у всех изолятов геномной груп­пы 6b1.A/187A. В этой группе только у 1 изолята А/ Ярославль/135-L/2020 из секционного материала лёг­ких умершего пациента обнаружена мутация D222G, которую, по данным Д.К. Львова и соавт. [17], ранее чаще всего наблюдали у штаммов, выделенных от па­циентов, скончавшихся в результате летальной пер­вичной вирусной пневмонии. У изолята самой новой геномной группы 6b1.A/156K выявлены 2 мутации в HA: K130M/K133M и N156K/N159K.

Мутации в белках полимеразного комплекса (PA, PB2) также способствовали усилению адаптации к организму человека [18][19]. Например, мута­ция PB2 T81I обнаружена у всех штаммов выбор­ки A(H1N1)pdm09, а мутация PA S225C выявлена у 18 изолятов геномной группы 6b1.A/183P-5a (Мо­сква, Ярославль, Чебоксары, Липецк, Великий Новго­род), у 1 - геномной группы 6b1.A/187A и у 1 изолята группы 6b1.A/156K. Отметим, что в число имеющих мутацию в PA (S225C) вошли штаммы А/Ярославль/ 134-Т/2020 (трахея), А/Ярославль/135-Т/2020 (тра­хея), А/Ярославль/135-L/2020 (лёгкое), отличавшиеся преобладанием а2-3-рецепторной специфичности.

Таким образом, все штаммы вирусов гриппа, выяв­ленные в сезоне 2019-2020 гг. на территории России, принадлежали основным генетическим группам, за­регистрированным по данным GISAID.

Чувствительность к препаратам с антинейрами- нидазной активностью изучена для 139 эпидемиче­ских штаммов вирусов гриппа: A(H1N1)pdm09 (81), A(H3N2) (10) и В (48). У большинства из них обна­ружена нормальная чувствительность к озельтамивиру и занамивиру; концентрация препаратов (IC50) со­ставляла менее 1,05 и 0,51 нМ для штаммов A(H1N1) pdm09, менее 1,17 и 1,41 нМ - для штаммов A(H3N2) и менее 27,09 и 15,80 нМ - для штаммов вируса гриппа В соответственно. У 1 штамма А/Чебоксары/125/2020 (H1N1)pdm09 регистрировали сниженную чувстви­тельность как к озельтамивиру (98,9 нМ), так и к занамивиру (13,1 нМ). В отношении последнего штамма выявлена мутация в позиции 152 активного сайта нейраминидазы (NA) с заменой аргинина (R) на лизин (K), которую связывают с пониженной чувствительностью к антинейраминидазным препаратам.

Обсуждение

Эпидемический сезон 2019-2020 гг. имел свои осо­бенности по спектру циркулирующих возбудителей ОРВИ, а также появлению в ноябре 2019 г. и актив­ному распространению по странам мира в феврале- марте 2020 г. нового коронавируса SARS-CoV-2 [4][5]. Первые случаи появления этого вируса в России были детектированы в феврале 2020 г. после прохождения пиковой активности вирусов гриппа. Представлен­ные в настоящей работе данные во многом согласу­ются с результатами, полученными в других странах Северного полушария, однако имеются и некоторые различия [18][19].

Начало эпидемического сезона характеризова­лось социркуляцией вирусов гриппа A(H1N1)pdm09, A(H3N2) и представителей обеих эволюционных ли­ний вируса гриппа В. Значительный рост активности был отмечен к концу января 2020 г. Оценить продол­жительность и интенсивность эпидемии, в том числе в РФ, стало затруднительным в связи с появлением и распространением нового коронавируса SARS- CoV-2. Циркуляция сезонных альфа-коронавирусов (CoV) не отличалась от таковой в предыдущие годы, и в период 2019-2020 гг. б0льшую активность их ре­гистрировали в декабре-январе, при этом частота их диагностирования в среднем составила не более 1,0%, а в структуре ОРВИ - 5,2%. Наибольшее число поло­жительных проб выявляли в городах Урала и Сибири (1,1 и 10,4 % соответственно).

На европейской территории активность вирусов гриппа была отмечена в более ранние сроки - в ноя­бре 2019 г., с пиковыми значениями в период 5-7-й не­дель 2020 гг. [20][21][22]. Доминирование того или иного типа/подтипа вируса гриппа было различным по стра­нам региона; в частности, в северо-западной части б0льшую активность проявили вирусы A(H3N2). В целом по региону активность вирусов гриппа рас­пределилась следующим образом: A(H1N1)pdm09 - 41%, A(H3N2) - 33% и В - 26% (96,9% из которых - В/Виктория-подобные).

В странах Северной Америки высокая активность вирусов гриппа также была отмечена в более ранние сроки - с декабря 2019 г., с максимальными показате­лями в период 5-6-й недель 2020 г. [23]. В структуре циркулирующих штаммов - вирусы гриппа A(H1N1) pdm09 (60%) и В/Виктория-подобные (35%).

В странах Восточной Азии активность вирусов гриппа также началась относительно рано, в дека­бре 2019 г., при доминировании вирусов A(H3N2) в КНР (социркуляция с вирусами гриппа A(H1N1) pdm09 и В) и Монголии, вируса гриппа A(H1N1) pdm09 - в Японии и Республике Корея [20]. Ретро­спективный анализ частоты выявления положитель­ных проб на грипп в КНР с появлением нового ко­ронавируса SARS-CoV-2 не выявил его негативного влияния, и в количественном отношении текущий сезон был сравним с предыдущими несмотря на раз­личия по доминирующим типам.

В некоторых странах Северной Африки, Западной и Центральной Азии рост активности возбудителей гриппа был отмечен между октябрём 2019 г. и ян­варём 2020 г., в период которого циркулировали виру­сы гриппа А и В в разных соотношениях [20].

На территории Северной Африки и Западной Азии доминировали штаммы вируса гриппа A(H1N1) pdm09, в то время как в Центральной Азии отмечена практически равнозначная активность вирусов грип­па A(H1N1)pdm09 и A(H3N2).

В большинстве стран Азии с тропическим и суб­тропическим климатом (Лаос, Иран, Малайзия, Оман, Катар) доминировал вирус гриппа A(H1N1)pdm09; в странах же Центральной и Южной Америки с тро­пическим климатом отмечена социркуляция вирусов A(H1N1)pdm09, A(H3N2) и В. Высокая активность вируса A(H1N1)pdm09 отмечена в Сальвадоре и Мек­сике, A(H3N2) - в Никарагуа [20].

Оценка рисков гриппозной инфекции у пациентов с тяжёлыми острыми респираторными инфекциями (ТОРИ), проведённая в странах Европейского регио­на, показала, что 49% из 38 235 пациентов были в воз­расте 0-49 лет. Этиологическая структура вирусов гриппа составила: A(H1N1)pdm09 - 61%, A(H3N2) - 29% и В - 10% [22].

Изучение антигенных и генетических свойств по­пуляции циркулировавших штаммов выявило их ге­терогенность, а также в ряде стран несоответствие характеристик штаммов вирусов гриппа A(H3N2) и В свойствам вакцинных вирусов [21][22][23].

В частности, в странах Европейского региона штаммы вирусов гриппа A(H1N1)pdm09 были пред­ставлены 4 генетическими группами, б0льшая часть которых (92%) принадлежала к группе 6В.1А5А (А/ Норвегия/3433/2018) [21]. Наибольшая гетероген­ность, как и ранее, была отмечена для штаммов виру­са A(H3N2): 53% было отнесено к генетической груп­пе 3С.3а (А/Канзас/14/2018), 33% - к 3С.2а1b+T131K (А/Южная Австралия/34/2019), 8% возбудителей ТОРИ - к генетической группе 3С.2а1b+τ135K-B (А/Гонконг/2675/2019) и 6% - к 3С.2а1b+T131K-A (А/Ла Риоха/2202/2018). Это свидетельствует о том, что более половины популяции данного штамма соот­ветствовало свойствам вакцинного вируса (в отличие от России и других стран). Подавляющее большин­ство штаммов вируса гриппа В (91%) было отнесено к линии В/Виктория-подобных, ветви 1A(del162-164), представитель В/Вашингтон/02/2019, что так­же отличало их от вакцинного вируса (В/Колора­до/06/2017, 1A(del162-163)), но было характерным для всех стран мира.

Результаты мониторинга чувствительности эпиде­мических штаммов к противовирусным препаратам показали, что из числа более чем 4000 протести­рованных образцов (Европейский регион, США) пониженную чувствительность к озельтамивиру проявили только 7 (0,4%) штаммов вируса гриппа A(H1N1)pdm09 и 1 (0,1%) - гриппа В; к занамивиру - 1 (0,1%) штамм вируса гриппаA(H1N1)pdm09 и 2 (0,1%) штамма вируса гриппа В; к обоим пре­паратам - 3 штамма: по 1 штамму вирусов гриппа A(H1N1)pdm09, A(H3N2) и В. Наряду с этим все изученные штаммы были резистентными к препа­ратам адамантанового ряда [22][23]. Со временем число штаммов с резистентностью к антинейраминидазным препаратам, возможно, будет возрастать. Это вызывает необходимость разработки веществ с другим механизмом действия. Одним из таких весьма перспективных разработанных исследовате­лями фирмы Roche препаратов является Baloxavir marboxil (BXM, Xofluza®). Препарат ингибирует эндонуклеазу полимеразного комплекса, блокируя на ранней стадии репликацию вируса. Крайне важ­на скорейшая регистрация этого средства в каче­стве препарата резерва при предстоящих пандемиях гриппа. Он уже зарегистрирован в США, Японии и ряде других стран [24][25][26].

28 февраля 2020 г. ВОЗ опубликовала рекомендации по составу гриппозных вакцин для стран Северного полушария в 2020-2021 гг. 4-валентные препараты должны содержать компоненты: A(H1N1)pdm09 - ви­рус, подобный А/Гуандонг Маонан/SWL1536/2019 (6b1.A/187A); A(H3N2) - вирус, подобный А/Гон­конг/2671/2019 (3С.2аШ+135К+137Р); В - вирус, по­добный В/Вашингтон/02/2019 (линия В/Виктория/2/87) (3Del) и вирус, подобный В/Пхукет/3073/2013 (линия В/Ямагата/16/88) (ветвь 3). В качестве составной ча­сти 3-валентных вакцин против гриппа В рекоменду­ется вирус, подобный В/Вашингтон/02/2019 (линия В/ Виктория/2/87) (ветвь 3Del) [27].

Ситуация с инфицированием людей вирусами грип­па птиц была относительно благоприятной; послед­ний случай инфицирования вирусом гриппа A(H5N1) зафиксирован в Непале 30 апреля 2019 г. (общее число составило 861, из которых 445 (52,8%) - с летальным исходом). Вирус гриппа A(H5) продолжают детек­тировать у птиц в Африке, Европе, Азии и Океании (табл. 4) [2]. За последний год зарегистрирован 1 слу­чай инфицирования вирусом гриппа A(H5N6) (общее число составило 24, включая 7 с летальным исхо­дом). Новых случаев инфицирования вирусом гриппа птиц A(H7N9) детектировано не было (общее число составило 1568, из них 615 - с летальным исходом). Выявлено 7 новых эпизодов инфицирования людей вирусом гриппа птиц A(H9N2), всего за период на­блюдения известно о 33 случаях. К настоящему вре­мени официально зарегистрировано 2553 лаборатор­но подтверждённых случаев заражения возбудителем Ближневосточного респираторного синдрома (MERS- CoV), из них 876 - с летальным исходом в 26 странах [28].

 

Таблица 4. Циркуляция вируса гриппа птиц A(H5) в период с февраля по 1 сентября 2020 г. по данным ВОЗ (GISRS)

Table 4. Circulation of influenza virus of bird A(H5) in February to September 1, 2020 according to WHO (GISRS)

Регионы

Regions

Страна

Country

Птицы

Birds

Генетическая группа (клайд)

Clade

Дикие

Wild

Cельскохозяйственные

Poultry

ЕВРОПА

EUROPE

Болгария

Bulgaria

-

+

2.3.4.4b (H5N8)

 

Венгрия

Hungary

-

+

2.3.4.4b (H5N8)

 

Германия

Germany

+

+

2.3.4.4b (H5N8)

 

Польша

Poland

-

+

2.3.4.4b (H5N8)

 

Россия (азиатская часть) Russia (Asian part)

+

-

2.3.4.4b (H5N8)

 

Румыния

Romania

-

+

2.3.4.4b (H5N8)

АФРИКА

AFRICA

АЗИЯ

Египет

Egypt

Вьетнам

 

+

2.3.4.4b (H5N8) (H5N1)

ASIA

Vietnam

-

+

2.3.4.4g (H5N6) 2.3.4.4h (H5N6)

 

Индия

India

+

+

2.3.2.1a (H5N1)

 

Ирак

Iraq

-

+

? (H5N8)

 

Китайская Народная Республика China

-

+

2.3.4.4h (H5N6)

 

Китайская Народная Республика-Тайвань China-Taiwan

-

+

2.3.4.4c (H5N6)

 

Камбоджа

Cambodia

-

+

2.3.4.4h (H5N6)

ОКЕАНИЯ

OCEANIA

Филиппины

Philippines

-

+

? (H5N6)

По данным ВОЗ к 29 июня 2020 г. число заболевших новым коронавирусом SARS-CoV-2 в мире состави­ло 10 021 401 человек, летальный исход зафиксирован в 499 913 случаях. Наибольшее число случаев зареги­стрировано в США (2 496 628), Бразилии (1 313 667), Индии (548 318), Великобритании (311 155), Испа­нии (248 770), Италии (240 310), Германии (193 761), Франции (156 156) и Иране (222 669). В России пока­затели к концу июня составили 641 156 случаев зара­жения, 9166 - с летальным исходом [29].

Заключение

Отличительными особенностями эпидемического сезона 2019-2020 гг. стали, во-первых, более раннее начало в большинстве стран мира; во-вторых, прак­тически одновременная циркуляция вирусов гриппа A(H1N1)pdm09 и В на фоне низкой активности ви­руса гриппа A(H3N2); в-третьих, появление и ши­рокое распространение нового коронавируса SARS- CoV-2, который в определённой степени повлиял как на активность служб эпидемиологического надзора за гриппом и ОРВИ, так и на циркуляцию их возбуди­телей в апреле-июне 2020 г.

Как и ранее, на отдельных территориях РФ отме­чены различия по спектру циркулирующих возбуди­телей ОРВИ, в том числе вирусов гриппа. Выявлена гетерогенность популяции штаммов вируса гриппа A(H1N1)pdm09 с доминированием представителей генетической группы 6b1.A/183P-5a, отличающейся от группы 6b 1.A/183-P1, к которой относится вакцин­ный штамм сезона 2019-2020 гг. - A/Брисбен/02/20l8; при этом по антигенным свойствам эпидемические штаммы были близки вакцинному вирусу. Предста­вители вируса гриппа A(H3N2) в основном были отнесены к генетической группе 3С.2а, отличной от вируса, входившего в состав вакцин (3С.3а), в том числе по антигенным свойствам. Популяция виру­са гриппа В была представлена штаммами линии В/ Виктория-подобных, однако генетической группы V1A.3 (del162-164), отличной от входившего в состав вакцин вируса (V1A.2, del162-163), в том числе по ан­тигенным свойствам. Всё вышесказанное могло по­влиять на эффективность вакцинопрофилактики.

Сохранён благоприятный профиль чувствительно­сти возбудителей к препаратам с антинейраминидаз- ной активностью.

Появление и широкое распространение коронави- руса SARS-CoV-2 определяют необходимость непре­рывного проведения клинико-эпидемиологических исследований, в особенности тяжёлых и летальных случаев, этиологически связанных с ОРВИ.

×

About the authors

D. K. L’vov

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Author for correspondence.
Email: dk_lvov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8176-6582

D.Sci. (Med.), Prof., Academician of the Russian Academy of Sciences, Head of Department of Ecology of Viruses with Center of Ecology and Epidemiology of Influenza, D.I. Ivanovsky Institute of Virology

123098, Moscow

Russian Federation

E. I. Burtseva

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: elena-burtseva@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2518-6801

D.Sci. (Med.), Head of Etiology and Epidemiology of Influenza Laboratory, D.I. Ivanovsky Institute of Virology

123098, Moscow

Russian Federation

L. V. Kolobukhina

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: lkolobuchina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5775-3343
123098, Moscow Russian Federation

I. T. Fedyakina

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: irfed2@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6421-9632
123098, Moscow Russian Federation

N. V. Bovin

Institute of Bioorganic Chemistry named after academicians M.M. Shemyakin and Yu.A. Ovchinnikov of the Russian Academy of Sciences

Email: professorbovin@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8669-4477
117997, Moscow Russian Federation

A. V. Ignatjeva

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: valgella@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6206-2299
123098, Moscow Russian Federation

K. G. Krasnoslobodtsev

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: kkg_87@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1745-9128
123098, Moscow Russian Federation

E. L. Feodoritova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: flulab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1472-1357
123098, Moscow Russian Federation

S. V. Trushakova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: s.trushakova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9610-3041
123098, Moscow Russian Federation

N. V. Breslav

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: n.belyakova1983@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6946-5119
123098, Moscow Russian Federation

L. N. Merkulova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: flulab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7260-0879
123098, Moscow Russian Federation

E. A. Mukasheva

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: mukasheva_evgeniya@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5688-5309
123098, Moscow Russian Federation

I. N. Khlopova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: flulab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7419-590X
123098, Moscow Russian Federation

O. L. Voronina

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: olv550@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7206-3594
123098, Moscow Russian Federation

E. I. Aksyonova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: olv550@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2704-6730
123098, Moscow Russian Federation

M. S. Kunda

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: olv550@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-1945-0397
123098, Moscow Russian Federation

N. N. Ryzhova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: olv550@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5361-870X
123098, Moscow Russian Federation

R. V. Vartanjan

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: flulab@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1656-3716
123098, Moscow Russian Federation

L. B. Kistenyova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: lborisovna2007@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7336-409X
123098, Moscow Russian Federation

I. M. Kirillov

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: irfed2@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4933-850X
123098, Moscow Russian Federation

E. S. Proshina

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: irfed2@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2348-141X
123098, Moscow Russian Federation

A. G. Rosatkevich

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: rosatkevich@icloud.com
ORCID iD: 0000-0003-0008-8711
123098, Moscow Russian Federation

I. S. Kruzhkova

FSBI «National Research Centre of Epidemiology and Microbiology named after honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia

Email: lkolobuchina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1983-481X
123098, Moscow Russian Federation

A. L. Zaplatnikov

FSBO DPE Russian Academy of Continuous Professional Education of the Ministry of Health of Russia

Email: zaplatnikov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1303-8318
123836, Moscow Russian Federation

M. V. Bazarova

Clinical Hospital for Infectious Diseases №1 of the Department of Health of Moscow

Email: 03bmv@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7322-7896
125367, Moscow Russian Federation

S. V. Smetanina

Clinical Hospital for Infectious Diseases №1 of the Department of Health of Moscow

Email: 03bmv@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3763-697X
125367, Moscow Russian Federation

M. V. Kharlamov

FBIH «Center of hygiene and epidemiology in Novgorod region»

Email: info@cgevnov.ru
173002, Novgorod Velikiy Russian Federation

N. L. Karpov

FBIH «Center of hygiene and epidemiology in Yaroslavl’ region»

Email: pautova@fguz.yar.ru
150054, Yaroslavl’ Russian Federation

A. V. Shikhin

FBIH «Center of hygiene and epidemiology in Tomsk region»

Email: virsesto@mail.tomsknet.ru
634012, Tomsk Russian Federation

References

  1. King A.M., Adams M.J., Carstens E.B., Lefkowitz E.J., eds. Virus Taxonomy. London: Academic Press Elsevier; 2012.
  2. Львов Д.К., ред. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.: МИА; 2013.
  3. WHO. Global Influenza Strategy 2019–2020. Available at: https://apps.who.int/iris/handle/10665/311184.
  4. WHO. Avian and other zoonotic influenza. Available at: http://www.who.int/influenza/human_animal_interface/.
  5. Dawood F.S., Jain S., Finelli L., Shaw M.W., Lindstrom S., Garten R.J., et al. Emergence of a novel swine-origin influenza A(H1N1) virus in humans. N. Engl. J. Med. 2009; 360(25): 2605–15. https://doi.org/10.1056/nejmoa0903810.
  6. Львов Д.К., Альховский С.В., Колобухина Л.В., Бурцева Е.И. Этиология эпидемической вспышки COVID-19 в г. Ухань (провинция Хубэй, Китайская Народная Республика), ассоциированной с вирусом 2019-nCoV (Nodovirales, Coronaviridae, Coronavirinae, Betacoronavirus, подрод Sarbecovirus): уроки эпидемии SARS-CoV. Вопросы вирусологии. 2020; 65(1): 6–15. https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-1-6-15.
  7. Львов Д.К., Альховский С.В. Истоки пандемии COVID-19: экология и генетика коронавирусов (Betacoronavirus: Coronaviridae) SARS-CoV, SARS-CoV-2 (подрод Sarbecovirus), MERSCoV (подрод Merbecovirus). Вопросы вирусологии. 2020; 65(2):62–70. https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-2-62-70.
  8. Львов Д.К., Бурцева Е.И., Мукашева Е.А., Колобухина Л.В., Трушакова С.В., Бреслав Н.В. и др. Активность вирусов гриппа в сезоне 2017–2018 гг. в России и странах Северного полушария: конфликт по В-вирусному компоненту вакцин. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2019; 18(3): 13–21. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2019-18-3-13-21.
  9. Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Бовин Н.В., Малышев Н.А., Чучалин А.Г., Колобухина Л.В. и др. Корреляция между рецепторной специфичностью штаммов пандемического вируса гриппа A(H1N1)pdm09, изолированных в 2009–2011 гг., структурой рецептор-связывающего сайта и вероятностью развития летальной первичной вирусной пневмонии. Вопросы вирусологии. 2012; 57(1): 14–20.
  10. Rogers G.N., Paulson J.C. Receptor determinants of human and animal influenza virus isolates: differences in receptor specificity of the H3 hemagglutinin based on species of origin. Virology. 1983; 127(2): 361–73. https://doi.org/10.1016/0042-6822(83)90150-2.
  11. Zhou B., Donnelly M.E., Scholes D.T., Hatta M., Kawaoka Y., Wentworth D.E. Single-reaction genomic amplification accelerates sequencing and vaccine production for classical and Swine origin human influenza A viruses. J. Virol. 2009; 83(19): 10309–13. https://doi.org/10.1128/JVI.01109-09.
  12. Zhou B., Lin X., Wang W., Halpin R.A., Stockwell T.B., Barr I.G., et al. Universal Influenza B Virus Genomic Amplification Facilitates Sequencing, Diagnostics, and Reverse Genetics. J. Clin. Microbiol. 2014; 52(5): 1330–7. https://doi.org/10.1128/JCM.03265-13.
  13. Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A., Kumar S. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0. Mol. Biol. Evol. 2013; 30(12): 2725–9. https://doi.org/10.1093/molbev/mst197.
  14. Hadfield J., Megill C., Bell S.M., Huddleston J., Potter B., Callender C., et al. Nextstrain: real-time tracking of pathogen evolution. Bioinformatics. 2018; 34(23): 4121–3. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/bty407.
  15. Lakdawala S.S., Jayaraman A., Halpin R.A., Lamirande E.W., Shih A.R., Stockwell T.B., et al. The soft palate is an important site of adaptation for transmissible influenza viruses. Nature. 2015; 526(7571): 122–5. https://doi.org/10.1038/nature15379.
  16. Walther T., Karamanska R., Chan R.W., Chan M.C., Jia N., Air G., et al. Glycomic analysis of human respiratory tract tissues and correlation with influenza virus infection. PLoS Pathog. 2013; 9(3):e1003223. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003223.
  17. Львов Д.К., Богданова В.С., Кириллов И.М., Щелканов М.Ю., Бурцева Е.И., Бовин Н.В. и др. Эволюция пандемического вируса гриппа A(H1N1)pdm09 в 2009–2016 гг.: динамика рецепторной специфичности первой субъединицы гемагглютинина (НА1). Вопросы вирусологии. 2019; 64(2): 63–72. https://doi.org/10.18821/0507-4088-2019-64-2-63-72.
  18. Finkelstein D.B., Mukatira S., Mehta P.K., Obenauer J.C., Su X., Webster R.G., et al. Persistent host markers in pandemic and H5N1 influenza viruses. J. Virol. 2007; 81(19): 10292–9. https://doi.org/10.1128/JVI.00921-07.
  19. Miotto O., Heiny A., Tan T.W., August J.T., Brusic V. Identification of human-to-human transmissibility factors in PB2 proteins of influenza A by large-scale mutual information analysis. BMC Bioinformatics. 2008; 9(Suppl. 1): S18. https://doi.org/10.1186/1471-2105-9-S1-S18.
  20. WHO. Influenza updates. Available at: https://www.who.int/influenza/surveillance_monitoring/updates/.
  21. WHO. FluNet Summary. Available at: https://www.who.int/influenza/gisrs_laboratory/updates/summaryreport/.
  22. Joint ECDC-WHO/Europe weekly influenza updates. Available at: https://www.flunewseurope.org/.
  23. Weekly U.S. Influenza Surveillance Reports (FluView). Available at: https://www.cdc.gov/flu/weekly/index.htm.
  24. Kawaguchi N., Koshimichi H., Wajimer T. Evaluation of drug-drug interaction potential between baloxavir marboxil and oseltamivir in health subjects. Clin. Drug. Investig. 2018; 38(1): 1053–60. https://doi.org/10.1007/s40261-018-0697-2.
  25. Hayden F.G., Sugaya N., Hirotsu N., Lee N., de Jong M.D., Hurt A.C., et al. Baloxavir marboxil for uncomplicated influenza in adults and adolescents. N. Eng. J. Med. 2018; 379(10): 913–23. https://doi.org/10.1056/nejmoa1716197.
  26. FDA prescribing information: XOFLUZATM (baloxavir marboxil) tablets for oral use. Initial U.S. Approval: 2018. Available at: https://www.accessdata.fda.gov/drugsatfda_docs/label/2018/210854s000lbl.pdf.
  27. WHO. Recommended composition of influenza virus vaccines for use in the 2020–2021 northern hemisphere influenza season. Available at: https://www.who.int/influenza/vaccines/virus/recommendations/2020-21_north/.
  28. ВОЗ. Коронавирус Ближневосточного респираторного синдрома (БВРС-КоВ). Available at: https://www.who.int/features/qa/mers-cov/ru/.
  29. ВОЗ. Коронавирус COVID-19. Available at: https://www.who.int/ru/emergencies/diseases/novel-coronavirus-2019.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2021 L’vov D.K., Burtseva E.I., Kolobukhina L.V., Fedyakina I.T., Bovin N.V., Ignatjeva A.V., Krasnoslobodtsev K.G., Feodoritova E.L., Trushakova S.V., Breslav N.V., Merkulova L.N., Mukasheva E.A., Khlopova I.N., Voronina O.L., Aksyonova E.I., Kunda M.S., Ryzhova N.N., Vartanjan R.V., Kistenyova L.B., Kirillov I.M., Proshina E.S., Rosatkevich A.G., Kruzhkova I.S., Zaplatnikov A.L., Bazarova M.V., Smetanina S.V., Kharlamov M.V., Karpov N.L., Shikhin A.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-77676 от 29.01.2020.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies