Эволюционные изменения генов NA и НА вируса гриппа H3N2 в московском регионе в период 2003-2009 гг.
- Выпуск: Том 56, № 5 (2011)
- Страницы: 9-15
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.10.2011
- URL: https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/12094
- ID: 12094
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Во время вспышки гриппа 2009 г. в Москве от больных людей выделяли вирусы гриппа H3N2 путем размножения в культурах кишечного (линия Сасо-2) или бронхиального (линия Calu-3) эпителия человека, поддерживающих расщепление вирусного белка HA0 → НА1 + НА2 и многоцикловую репликацию вирусов. Анализ нуклеотидной последовательности вирусных РНК показал, что вирусы 2009 г. отличались от изолятов 2003 г. по 14 и 21 аминокислотам в белках нейраминидазы (NA) и гемагглютинина (HA) соответственно. Ген NA имел полноценную длину 1762 нуклеотида, тогда как изоляты 2003 г. имели делецию 66 нуклеотидов (22 аминокислоты) в стеблевом регионе ("короткий" генотип NA). NA изолятов 2009 и 2003 гг. имела аминокислотный профиль, характерный для штаммов, чувствительных к осельтамивиру и занамивиру. НА вирусов 2009 г. имел сайт гликозилирования Asn181 (Asn165 от сигнального пептида), что коррелировало с полноразмерной NA. Вирусы 2009 и 2003 гг. имели Phe209 и Ser209 соответственно в рецепторном центре НА, что коррелировало с их различиями в гемагглютинирующей активности. При филогенетическом сравнении гены NA московских вирусов 2003 и 2009 гг. находились в одном генетическом клэйде с единым общим предшественником, тогда как гены НА этих вирусов расходились на большую генетическую дистанцию и локализовались в различных клэйдах. Распределение вирусов на филогенетическом древе позволило предположить, что московские изоляты 2009 г. не были прямыми родственниками вируса 2003 г. и в период с 2003 по 2009 г. вирус гриппа H3N2 с "коротким" генотипом NA был вытеснен из московской популяции вирусом-мигрантом с полноразмерным геном NA.
Ключевые слова
Список литературы
- Abed Y., Baz M., Boivin G. A novel neuraminidase deletion mutation conferring resistance to oseltamivir in clinical influenza A/H3N2 virus // J. Infect. Dis. - 2009. - Vol. 199, N 2. - P. 180-183.
- Air G. M., Els M. C., Brown L. E. et al. Location of antigenic sites on the three-dimensional structure of the influenza N2 virus neuraminidase // Virology. - 1985. - Vol. 145, N 2. - P. 237-248.
- Baigent S. J., McCauley J. W. Glycosylation of haemagglutinin and stalk-length of neuraminidase combine to regulate the growth of avian influenza viruses in tissue culture // Virus Res. - 2001. - Vol. 79. - P. 177-185.
- Blok J., Air G. M. Block deletions in the neuraminidase genes from some influenza A viruses of the N1 subtype // Virology. - 1982. - Vol. 118, N 1. - P. 229-234.
- Claas E. C. J., Osterhaus A. D. M. E., van Beek R. et al. Human influenza A H5N1 virus related to a highly pathogenic avian influenza virus // Lancet. - 1998. - Vol. 351. - P. 472-477.
- Els M. C., Air G. M., Murti K. G. et al. An 18-amino acid deletion in an influenza neuraminidase // Virology. - 1985. - Vol. 142, N 2. - P. 241-247.
- Fiore A. E., Uyeki T. M., Broder K. et al. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Prevention and control of influenza with vaccines: recommendations of the Advisory Committee on Immunization Practice (ACIP) // MMWR Recomm. Rep. - 2010. - Vol. 59, N RR-8. - P. 1-62.
- Gulati S., Smith D. F., Air G. M. Deletion of neuraminidase and resistance to oseltamivir may be a consequence of restricted receptor specificity in recent H3N2 influenza viruses // Virol. J. - 2009. - Vol. 6. - P. 22-37.
- Luo G., Chung J., Palese P. Alterations of the stalk of the influenza virus neuraminidase: deletions and insertions // Virus Res. - 1993. - Vol. 29, N 3. - P. 321-330.
- Matrosovich M., Zhou N., Kawaoka Y., Webster R. The surface glycoproteins of H5 influenza viruses isolated from humans, chickens, and wild aquatic birds have distinguishable properties // J. Virol. - 1999. - Vol. 73, N 2. - P. 1146-1155.
- Medeiros R., Escriou N., Naffakh N. et al. Hemagglutinin residues of recent human A(H3N2) influenza viruses that contribute to the inability to agglutinate chicken erythrocytes // Virology. - 2001. - Vol. 289, N 1. - P. 74-85.
- Memoli M. J., Hrabal R. J., Hassantoufighi A. et al. Rapid selection of a transmissible multidrug-resistant influenza A/H3N2 virus in an immunocompromised host // J. Infect. Dis. - 2010. - Vol. 201, N 9. - P. 1397-1403.
- Moules V., Ferraris O., Terrier O. et al. In vitro characterization of naturally occurring influenza H3NA-viruses lacking the NA gene segment: toward a new mechanism of viral resistance? // Virology. - 2010. - Vol. 404, N 2. - P. 215-224.
- Nelson M. I., Simonsen L., Viboud C. et al. Stochastic processes are key determinants of short-term evolution in influenza A virus // PLoS Pathog. - 2006. - Vol. 2, N 12. - P. e125.
- Nelson M. I., Simonsen L., Viboud C. et al. Phylogenetic analysis reveals the global migration of seasonal influenza A viruses // PLoS Pathog. - 2007. - Vol. 3, N 9. - P. 1220-1228.
- Nobusawa E., Ishihara H., Morishita T. et al. Change in receptor-binding specificity of recent human influenza A viruses (H3N2): a single amino acid change in hemagglutinin altered its recognition of sialyloligosaccharides // Virology. - 2000. - Vol. 278. - P. 587-596.
- Okada J., Ohshima N., Kubota-Koketsu R. et al. Localization of epitopes recognized by monoclonal antibodies that neutralized the H3N2 influenza viruses in man // J. Gen. Virol. - 2011. - Vol. 92, N 1. - P. 230-241.
- Okomo-Adhiambo M., Nguyen H. T., Sleeman K. et al. Host cell selection of influenza neuraminidase variants: implications for drug resistance monitoring in A(H1N1) viruses // Antiviral Res. - 2010. - Vol. 85, N 2. - P. 381-388.
- Ruiz-Carrascoso G., Casas I., Pozo F. et al. Prolonged shedding of amantadine- and oseltamivir-resistant influenza A(H3N2) virus with dual mutations in an immunocompromised infant // Antiviral Ther. - 2010. - Vol. 15, N 7. - P. 1059-1063.
- Russell C. A., Jones T. C., Barr I. G. et al. The global circulation of seasonal influenza A(H3N2) viruses // Science. - 2008. - Vol. 320, N 5874. - P. 340-346.
- Sheu T. G., Deyde V. M., Okomo-Adhiambo M. et al. Surveillance for neuraminidase inhibitor resistance among human influenza A and B viruses circulating worldwide from 2004 to 2008 // Antimicrob. Agents Chemother. - 2008. - Vol. 52, N 9. - P. 3284-3292.
- Skehel J. J., Wiley D. C. Receptor binding and membrane fusion in virus entry: the influenza hemagglutinin // Annu. Rev. Biochem. - 2000. - Vol. 69. - P. 531-569.
- Sorrell E. M., Song H., Pena L., Perez D. R. A 27-amino-acid deletion in the neuraminidase stalk supports replication of an avian H2N2 influenza A virus in the respiratory tract of chickens // J. Virol. - 2010. - Vol. 84, N 22. - P. 11831-11840.
- Taubenberger J. K., Kash J. C. Influenza virus evolution, host adaptation, and pandemic formation // Cell Host Microbe. - 2010. - Vol. 7, N 6. - P. 440-451.
- Wagner R., Matrosovich M., Klenk H. D. Functional balance between haemagglutinin and neuraminidase in influenza virus infections // Rev. Med. Virol. - 2002. - Vol. 12. - P. 159-166.
- Wright P. F., Neumann G., Kawaoka Y. // Fields virology / Eds D. M. Knipe et al. - Philadelphia, 2007. - P. 1691-1740.
- Zhirnov O. P., Klenk H. D. Human influenza viruses are proteolytically activated and do not induce apoptosis in CACO-2 cells // Virology. - 2003. - Vol. 313. - P. 198-200.
- Zhirnov O. P., Vorobjeva I. V., Saphonova O. A. et al. Biochemical properties of clinical influenza viruses propagated in human intestinal cell line // Biochemistry. - 2007. - Vol. 72, N 4. - P. 493-505.
- Zhirnov O. P., Vorobjeva I. V., Saphonova O. A. et al. Structural and evolutionary characteristics of HA, NA, NS, and M genes of clinical influenza A/H3N2 viruses passaged in human and canine cells // J. Clin. Virol. - 2009. - Vol. 45. - P. 332-343.