<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Problems of Virology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Problems of Virology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Вопросы вирусологии</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0507-4088</issn><issn publication-format="electronic">2411-2097</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Central Research Institute for Epidemiology</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">12148</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Статьи</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Changes in the reproduction 40 of tick-borne encephalitis virus in cell cultures</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Динамика репродукции вируса клещевого энцефалита в культурах клеток</trans-title></trans-title-group></title-group><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2012-04-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>04</month><year>2012</year></pub-date><volume>57</volume><issue>2</issue><issue-title xml:lang="en">VOL 57, NO2 (2012)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">ТОМ 57, №2 (2012)</issue-title><fpage>40</fpage><lpage>43</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2023-06-09"><day>09</day><month>06</month><year>2023</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2012, Morozova O.V., Grishechkin A.E., Bakhvalova V.N., Isayeva E.I., Podchernyaeva R.Y.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2012, Морозова О.В., Гришечкин А.Е., Бахвалова В.Н., Исаева Е.И., Подчерняева Р.Я.</copyright-statement><copyright-year>2012</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Morozova O.V., Grishechkin A.E., Bakhvalova V.N., Isayeva E.I., Podchernyaeva R.Y.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Морозова О.В., Гришечкин А.Е., Бахвалова В.Н., Исаева Е.И., Подчерняева Р.Я.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/12148">https://virusjour.crie.ru/jour/article/view/12148</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>The currently used tick-borne encephalitis virus vaccines are based on the inactivation of tick-borne encephalitis virus (TBEV) of Far Eastern or West European genetic types from the primary cultures of chick embryo fibroblasts. Since the WHO recommends that vaccines should be designed using continuous cell cultures rather than chick embryos as a substrate, this investigation has compared the infection of continuous monolayer SPEV, Vero E6, and vaccine line Vero (B) cell cultures with TBEV strains of the Siberian and Far Eastern genetic types dominating in the endemic regions of Russia. After cell infection with Far Eastern (Sofyin and 205 strains) or Siberian (Aina, 2530, 2689, and 2703 strains) TBEV genetic types, the viable TBEV titers reached 2.8 lg CPD50 for Vero (B) cells, 5.5 lg CPD50 for Vero E6 cells, and up to 9 lg CPD50 for SPEV cells. The quantitative scores of TBEV E antigen in enzyme immunoassay (EiA) and genome equivalents by reverse-transcription polymerase chain reaction (PCR), followed by real-time PCR, permitted one to estimate as high as 108 virions in 1 ml of culture fluid, which corresponded to those of the microscopic observations of CPD for SPEV cells and substantially exceeded the values for Vero E6 cells, and for Vero (B) cells in particular. The data of TBEV strain titration, EiA, and realtime reverse-transcription PCR suggest that the Russian vaccine Vero (B) cell line defined as meeting the WHO requirements, as well as Vero E6 cells may be used to design tick-borne encephalitis vaccine.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Используемые в настоящее время вакцины против клещевого энцефалита основаны на инактивации вируса клещевого энцефалита (ВКЭ) дальневосточного или западноевропейского генетических типов из первичных культур фибробластов куриных эмбрионов. Поскольку ВОЗ рекомендует разрабатывать вакцины с использованием в качестве субстрата не куриных эмбрионов, а перевиваемых культур клеток, проведено сравнение инфекции перевиваемых монослойных культур клеток СПЭВ, Vero E6 и вакцинной линии Vero (B) штаммами ВКЭ сибирского и дальневосточного генетических типов, доминирующих в эндемичных районах России. После заражения клеток ВКЭ дальневосточного (штаммы Софьин и 205) или сибирского (штаммы Айна, 2530, 2689 и 2703) генетических типов титры жизнеспособного ВКЭ достигали 2,8 lg ЦПД 50 для клеток Vero (B), 5,5 lg ЦПД 50 для Vero E6 и до 9 lg ЦПД 50 для клеток СПЭВ. Количественные оценки антигена E ВКЭ в иммуноферментном анализе и геном-эквивалентов посредством обратной транскрипции с последующей ПЦР в реальном времени позволили определить до 10 8 вирионов в 1 мл культуральной жидкости, что соответствовало микроскопическим наблюдениям ЦПД для клеток СПЭВ и существенно превышало значения для клеток Vero E6 и особенно для клеток Vero (B). На основании данных титрования штаммов ВКЭ, ИФА и ОТ-ПЦР в реальном времени отечественная вакцинная клеточная линия Vero (B), охарактеризованная в соответствии с требованиями ВОЗ, и клетки Vero E6 можно применять для разработки вакцин против клещевого энцефалита</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>tick-borne encephalitis</kwd><kwd>pig embryo kidney (SPEV) cell</kwd><kwd>green monkey kidney (Vero E6) cells</kwd><kwd>and vaccine Vero (B) cell line</kwd><kwd>hemagglutination reaction</kwd><kwd>enzyme immunoassay for E antigen</kwd><kwd>real-time reverse-transcription polymerase chain reaction</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>вирус клещевого энцефалита</kwd><kwd>клетки почки эмбриона свиньи (СПЭВ)</kwd><kwd>клетки почки зеленой мартышки Vero E6 и вакцинной линии Vero (B)</kwd><kwd>реакция гемагглютинации</kwd><kwd>иммуноферментный анализ на антиген E</kwd><kwd>ОТ-ПЦР в реальном времени</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Бахвалова В. Н., Рар В. А., Ткачев С. Е. и др. Генетический анализ штаммов вируса клещевого энцефалита Западной Сибири // Вопр. вирусол. - 2002. - Т. 45, № 5. - С. 11-13.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Морозова О. В., Бахвалова В. Н., Панов В. В. Сравнение методов детекции вируса клещевого энцефалита // Фундаментальные науки - медицине. - 2008. - С. 171-177.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Подчерняева Р. Я., Хижнякова Т. М., Михайлова Г. Р. и др. Линия клеток Vero (В) для приготовления медико-биологических препаратов // Вопр. вирусол. - 1996. - № 4. - С. 183-185.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Щипакин В. Н., Семашко И. В., Караванов А. С. и др. Оценка чувствительности иммуноферментного метода в определении инфекционного и неинфекционного антигенов вируса клещевого энцефалита // Вопр. вирусол. - 1989. - Т. 34, № 5. - С. 634-637.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Щучинова Л. Д.Эпидемиологический надзор и контроль инфекций, передающихся клещами, в Республике Алтай: Автореф. дис.. канд. мед. наук. - Омск, 2009.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Clarke D. H., Casals J. Techniques for hemagglutination and hemagglutination-inhibition with arthropod-borne viruses // Am. J. Trop. Med. Hyg. - 1958. - Vol. 7. - P. 561-573.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Kaverin N. V, Webster R. G. Impairment of multicycle influenza virus growth in Vero (WHO) cells by loss of trypsin activity // J. Virol. -1995. - Vol. 69. - P. 2700-2703.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Medema J. K., Meijer J., Kersten A. J. et al. Safety assessment of Madin Darby canine kidney cells as vaccine substrate // Bull. Wld Hlth Org. - 2006. - Vol. 123. - P. 243-250.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Sheets R. L. et al. Vaccine cell substrates // Expert Rev. Vaccines. -2004. - Vol. 3. - P. 633-638.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>WHO. Cell culture as a substrate for the production of influenza vaccine: memorandum from a WHO meeting // Bull. Wld Hlth Org. -1995. - Vol. 73. - P. 431-435.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
